Участие авторов

toxreview

Токсикологический вестник

Toxicological Review

0869-79223034-4611

Federal Scientific Center of Hygiene named after F.F. Erisman

10.47470/0869-7922-2026-34-4-273-284

zpqwdh

toxreview-1154

Research Article

ПРОФИЛАКТИЧЕСКАЯ ТОКСИКОЛОГИЯ

PREVENTIVE TOXICOLOGY

Экспериментальные данные о токсическом действии диоксида серы (обзор литературы)

Recent experimental data on toxic effects of sulfur dioxide (literature review)

https://orcid.org/0000-0002-4694-0175

Батенева

Влада Андреевна

Bateneva

Vlada A.

Младший научный сотрудник лаборатории промышленной токсикологии, ФБУН «Екатеринбургский медицинский научный центр профилактики и охраны здоровья рабочих промпредприятий» Роспотребнадзора, 620014, Екатеринбург, Россия

e-mail: bateneva.vlada@yandex.ru

Junior Researcher, Laboratory of Industrial Toxicology, Yekaterinburg Medical Research Center for Prophylaxis and Health Protection of Industrial Workers, Yekaterinburg, 620014, Russian Federation

e-mail: ilzira-minigalieva@yandex.ru

bateneva.vlada@yandex.ru

https://orcid.org/0000-0002-0097-7845

Минигалиева

Ильзира Амировна

Minigalieva

Ilzira A.

Доктор биологических наук, зав. Отделом токсикологии и биопрофилактики, ФБУН «Екатеринбургский медицинский научный центр профилактики и охраны здоровья рабочих промпредприятий» Роспотребнадзора, 620014, Екатеринбург, Россия

e-mail: ilzira-minigalieva@yandex.ru

Dr. Sci. (Biology), Head of the Department of Toxicology and Bioprophylaxis, Yekaterinburg Medical Research Center for Prophylaxis and Health Protection of Industrial Workers, Yekaterinburg, 620014, Russian Federation

e-mail: ilzira-minigalieva@yandex.ru

ilzira-minigalieva@yandex.ru

https://orcid.org/0009-0003-0780-5733

Никогосян

Карен Мерсопович

Nikogosyan

Karen M.

Научный сотрудник лаборатории научных основ биопрофилактики, ФБУН «Екатеринбургский медицинский научный центр профилактики и охраны здоровья рабочих промпредприятий» Роспотребнадзора, 620014, Екатеринбург, Россия

e-mail: nikoghosyankm@ymrc.ru

Researcher, Laboratory of Scientific Foundations of Bioprophylaxis, Yekaterinburg Medical Research Center for Prophylaxis and Health Protection of Industrial Workers, Yekaterinburg, 620014, Russian Federation

e-mail: nikoghosyankm@ymrc.ru

nikoghosyankm@ymrc.ru

https://orcid.org/0009-0000-4208-5469

Слободчикова

Александра Сергеевна

Slobodchikova

Alexandra S.

Лаборант-исследователь лаборатории промышленной токсикологии, ФБУН «Екатеринбургский медицинский научный центр профилактики и охраны здоровья рабочих промпредприятий» Роспотребнадзора, 620014, Екатеринбург, Россия

e-mail: slobodchikovaas@ymrc.ru

Research Assistant, Laboratory of Industrial Toxicology, Yekaterinburg Medical Research Center for Prophylaxis and Health Protection of Industrial Workers, Yekaterinburg, 620014, Russian Federation

e-mail: slobodchikovaas@ymrc.ru

slobodchikovaas@ymrc.ru

https://orcid.org/0000-0002-1022-9699

Рыбина

Татьяна Михайловна

Rybina

Tatsyana M.

Кандидат медицинских наук, доцент, доцент кафедры пульмонологии, фтизиатрии, аллергологии и профпатологии с курсом ПК и ПП учреждения образования Белорусский государственный медицинский университет, 220045, Минск, Республика Беларусь; директор общества с ограниченной ответственностью «Научно-практический центр МедЭвери», 220113, Минск, Республика Беларусь

e-mail: tanya-rybina@list.ru

Cand. Sci. (Medicine), Associate Professor, Department of Pulmonology, Phthisiology, Allergology, and Occupational Pathology with a Course in Advanced Training and Professional Development, Belarusian State Medical University, Minsk, 220045, Republic of Belarus; Director of the LLC “Scientific and Practical Center MedEveri”, Minsk, 220113, Republic of Belarus

e-mail: tanya-rybina@list.ru

tanya-rybina@list.ru

ФБУН «Екатеринбургский медицинский научный центр профилактики и охраны здоровья рабочих промпредприятий» РоспотребнадзораРоссияYekaterinburg Medical Research Center for Prophylaxis and Health Protection in Industrial WorkersRussian Federation

Учреждение образования «Белорусский государственный медицинский университет»; Общество с ограниченной ответственностью «Научно-практический центр МедЭвери»РоссияBelarusian State Medical University; MedEvery Scientific and Practical Center LLCRussian Federation

2026

16092026

344273284

2026

Батенева В.А., Минигалиева И.А., Никогосян К.М., Слободчикова А.С., Рыбина Т.М.

Bateneva V.A., Minigalieva I.A., Nikogosyan K.M., Slobodchikova A.S., Rybina T.M.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://www.toxreview.ru/jour/article/view/1154

Диоксид серы относится к наиболее распространённым техногенным загрязнителям атмосферного воздуха и представляет значительную опасность для здоровья населения, особенно в промышленно развитых регионах.

Цель настоящего обзора литературы – обобщение и систематизация современных экспериментальных данных о механизмах и токсических эффектах диоксида серы и его водорастворимых производных (сульфит- и бисульфит-ионов) на моделях in vivo и in vitro.

На основе анализа 64 научных работ, отобранных из международных и российских баз данных, подробно рассмотрены токсикокинетика и ключевые патогенетические пути. Установлено, что ведущими механизмами токсичности являются индукция интенсивного окислительного стресса, системного провоспалительного ответа через активацию фактора NF-κB и глубокое нарушение клеточного энергетического метаболизма вследствие митохондриальной дисфункции.

Обзор детально описывает системные токсические эффекты диоксида серы, выходящие за рамки прямого раздражающего действия на респираторный тракт. Представлены доказательства повреждения сердечно-сосудистой системы (кардиомиоцитарный апоптоз, структурные изменения миокарда), нервной системы (нейровоспаление, синаптическая дисфункция, апоптоз нейронов) и репродуктивной функции (нарушение сперматогенеза, повреждение гематотестикулярного барьера, угнетение овариального резерва). Отдельно обсуждаются генотоксический потенциал диоксида серы и его роль в нарушении энергетического гомеостаза клетки. Проведённый анализ расширяет понимание фундаментальных основ токсичности диоксида серы.

Участие авторов

Участие авторов: Батенева В.А., Никогосян К.М., Слободчикова А.С. – сбор и анализ материала, написание текста; Минигалиева И.А. – концепция исследования, утверждение окончательного варианта статьи; Рыбина Т.М. – сбор и анализ материала. Все соавторы – ответственность за целостность всех частей статьи.

Конфликт интересов

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов в связи с публикацией данной статьи.

Финансирование

Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.

Поступила в редакцию

Поступила в редакцию: 02 марта 2026 / Поступила после исправления: 03 июня 2026 / Принята к печати: 03 августа 2026 / Опубликована: 16 сентября, 2026

Sulfur dioxide is one of the most common anthropogenic air pollutants, posing a significant hazard to human health, especially in industrial regions.

The aim of this literature review is to summarize and systematize recent experimental data on the mechanisms and toxic effects of sulfur dioxide and its water-soluble derivatives (sulfite and bisulfite ions) in in vivo and in vitro models.

Based on the analysis of 64 publications selected from international and Russian databases, this review provides a detailed description of toxicokinetics and key pathogenetic pathways. We established that the leading mechanisms of toxicity include the induction of intense oxidative stress, a systemic proinflammatory response through NF-κB activation, and profound disruption of cellular energy metabolism due to mitochondrial dysfunction.

This review describes systemic toxic effects of sulfur dioxide, extending beyond its direct irritant effect on the respiratory tract. Evidence is presented of damage to the cardiovascular system (cardiomyocyte apoptosis and structural myocardial changes), nervous system (neuroinflammation, synaptic dysfunction, and neuronal apoptosis), and reproductive function (impaired spermatogenesis, damage to the blood-testis barrier, and ovarian suppression). In addition, the genotoxic potential of sulfur dioxide and its role in disrupting cellular energy homeostasis are discussed. The findings expand our understanding of the fundamental principles of sulfur dioxide toxicity.

Author contributions

Author contributions: Bateneva V.A., Nikogosyan K.M., Slobodchikova A.S. – data collection and analysis, draft manuscript preparation; Minigalieva I.A. – goal formulation, approval of the final version; Rybina T.M. – data collection and analysis. All co-authors are responsible for approving the final version of the article and ensuring the integrity of all its parts

Conflict of interest

Conflict of interest. The authors declare no obvious or potential conflicts of interest in connection with the publication of this article.

Funding

Funding. The authors declare no obvious or potential conflicts of interest in connection with the publication of this article.

Received

Received: March 2, 2026 / Revised: June 3, 2026 / Accepted: August 3, 2026 / Published: September 16, 2026

диоксид серысульфитбисульфиттоксичностьin vivoin vitroобзор

sulfur dioxidesulfitebisulfitetoxicityin vivoin vitroreview

References1

Smith S.J., Pitcher H., Wigley T.M.L. Global and regional anthropogenic sulfur dioxide emissions. Glob. Planet. Change. 2001; 29(1-2): 99–119. https://doi.org/10.1016/S0921-8181(00)00057-6 https://elibrary.ru/anhwuh

Сёмин П.О. Официальная информация о выбросах диоксида серы в атмосферный воздух и ее оценка с помощью дистанционного зондирования. Вестник Санкт-Петербургского университета. Право. 2022; 13(4): 1111–33. https://doi.org/10.21638/spbu14.2022.417 https://elibrary.ru/igmlas

Syomin P.O. Official information on sulfur dioxide emissions and its assessment using satellite remote sensing data. Vestnik Sankt-Peterburgskogo universiteta. Pravo. 2022; 13(4): 1111–33. https://doi.org/10.21638/spbu14.2022.417 https://elibrary.ru/igmlas (in Russian)

Zhou L., Lao Z., Fan X., Hao M., Yang Y. Sulfur dioxide derivatives aggravated ovalbumin-induced asthma through targeting TRPV1 and tight junctions. Biosci. Biotechnol. Biochem. 2023; 87(6): 627–37. https://doi.org/10.1093/bbb/zbad039 https://elibrary.ru/juaxdw

Wright N., Newell K., Chan K.H., Gilbert S., Hacker A., Lu Y., et al. Long-term ambient air pollution exposure and cardio-respiratory disease in China: Findings from a prospective cohort study. Environ. Health. 2023; 22(1): 30. https://doi.org/10.1186/s12940-023-00978-9 https://elibrary.ru/abnnae

Li L., Yang J., Song Y.F., Chen P.Y., Ou C.Q. The burden of COPD mortality due to ambient air pollution in Guangzhou, China. Sci. Rep. 2016; 6: 25900. https://doi.org/10.1038/srep25900 https://elibrary.ru/wptoch

Nie A., Meng Z. Sulfur dioxide derivative modulation of potassium channels in rat ventricular myocytes. Arch. Biochem. Biophys. 2005; 442(2): 187–95. https://doi.org/10.1016/j.abb.2005.08.004

Chen M.C., Wang C.F., Lai B.C., Hsieh S.W., Chen S.C., Hung C.H., et al. Air pollution is associated with poor cognitive function in Taiwanese adults. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2021; 18(1): 316. https://doi.org/10.3390/ijerph18010316 https://elibrary.ru/ddtejx

Chen Y.A., Chang Y.K., Su Y.R., Chang H.C. Ambient sulfur dioxide could have an impact on testicular volume from a observational study on a population of infertile male. BMC Urol. 2020; 20(1): 149. https://doi.org/10.1186/s12894-020-00710-6 https://elibrary.ru/lmftcj

Zhou N., Cui Z., Yang S., Han X., Chen G., Zhou Z., et al. Air pollution and decreased semen quality: a comparative study of Chongqing urban and rural areas. Environ. Pollut. 2014; 187: 145–52. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2013.12.030

Wang D., Wan M., Cheng N., Zheng T., Hu X., Li H., et al. Sulfur dioxide exposure and other factors affecting age at natural menopause in the Jinchuan cohort. Climacteric. 2015; 18(5): 722–32. https://doi.org/10.3109/13697137.2015.1015514

Arachchige D.L., Dwivedi S.K., Olowolagba A.M., Peters J., Beatty A.C., Guo A., et al. Dynamic insights into mitochondrial function: Monitoring viscosity and SO2 levels in living cells. J. Photochem. Photobiol. B. 2024; 258: 112986. https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2024.112986 https://elibrary.ru/aadawh

Song A., Lin F., Li J., Liao Q., Liu E., Jiang X., et al. Bisulfite and sulfite as derivatives of sulfur dioxide alters biomechanical behaviors of airway smooth muscle cells in culture. Inhal. Toxicol. 2014; 26(3): 166–74. https://doi.org/10.3109/08958378.2013.872211

Wang X., Zhao Y., Shi X., Gong M., Hao Y., Fu Y., et al. Sulfur dioxide derivatives attenuates consolidation of contextual fear memory in mice. Eur. J. Pharmacol. 2022; 914: 174658. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2021.174658 https://elibrary.ru/qqgaiq

Liu X., Zhou H., Zhang H., Jin H., He Y. Advances in the research of sulfur dioxide and pulmonary hypertension. Front. Pharmacol. 2023; 14: 1282403. https://doi.org/10.3389/fphar.2023.1282403 https://elibrary.ru/fhmkgm

Stipanuk M.H. Metabolism of sulfur-containing amino acids: how the body copes with excess methionine, cysteine, and sulfide. J. Nutr. 2020; 150(Suppl. 1): 2494S–505S. https://doi.org/10.1093/jn/nxaa094 https://elibrary.ru/bakoyd

Dahl A.R., Felicetti S.A., Muggenburg B.A. Clearance of sulfuric acid-introduced 35S from the respiratory tracts of rats, guinea pigs and dogs following inhalation or instillation. Fundam. Appl. Toxicol. 1983; 3(4): 293–7. https://doi.org/10.1016/s0272-0590(83)80142-0 https://elibrary.ru/iwmcuz

Chen S., Huang Y., Liu Z., Yu W., Zhang H., Li K., et al. Sulphur dioxide suppresses inflammatory response by sulphenylating NF-κB p65 at Cys38 in a rat model of acute lung injury. Clin. Sci. (Lond.) 2017; 131(21): 2655–70. https://doi.org/10.1042/CS20170274

Song Y., Peng H., Bu D., Ding X., Yang F., Zhu Z., et al. Negative auto-regulation of sulfur dioxide generation in vascular endothelial cells: AAT1 S-sulfenylation. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2020; S0006-291X(20)30306-5. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2020.02.040 https://elibrary.ru/spdons

Meng Z., Qin G., Zhang B., Geng H., Bai Q., Bai W., et al. Oxidative damage of sulfur dioxide inhalation on lungs and hearts of mice. Environ. Res. 2003; 93(3): 285–92. https://doi.org/10.1016/s0013-9351(03)00045-8

Meng Z., Bai W. Oxidation damage of sulfur dioxide on testicles of mice. Environ. Res. 2004; 96(3): 298–304. https://doi.org/10.1016/j.envres.2004.04.008

Wu S., Zhang X., Lu Y., Ma Y., Qi X., Wang X., et al. SO2 derivatives impair ovarian function by inhibiting Serpine1/NF-κB pathway-mediated ovarian granulosa cell survival. J. Hazard. Mater. 2025; 487: 137116. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2025.137116 https://elibrary.ru/pqsnce

Murad W., Singh R., Yen T.Y. An efficient algorithmic approach for mass spectrometry-based disulfide connectivity determination using multi-ion analysis. BMC Bioinformatics. 2011; 12(Suppl. 1): S12. https://doi.org/10.1186/1471-2105-12-S1-S12

Высочина И.В., Константинова И.К., Скворцова Н.Н. Влияние сернистого газа на гликогенолиз в легких и печени. Гигиена и санитария. 1974; 53(4): 3–6.

Li R., Meng Z. Effects of SO2 derivatives on expressions of MUC5AC and IL-13 in human bronchial epithelial cells. Arch. Toxicol. 2007; 81(12): 867–74. https://doi.org/10.1007/s00204-007-0212-7 https://elibrary.ru/curtuh

Qin G., Meng Z. Effects of sulfur dioxide derivatives on expression of oncogenes and tumor suppressor genes in human bronchial epithelial cells. Food Chem. Toxicol. 2009; 47(4): 734–44. https://doi.org/10.1016/j.fct.2009.01.005

Meng Z., Liu Y., Wu D. Effect of sulfur dioxide inhalation on cytokine levels in lungs and serum of mice. Inhal. Toxicol. 2005; 17(6): 303–7. https://doi.org/10.1080/08958370590922625

Meng Z., Liu Y. Cell morphological ultrastructural changes in various organs from mice exposed by inhalation to sulfur dioxide. Inhal. Toxicol. 2007; 19(6-7): 543–51. https://doi.org/10.1080/08958370701271373

Meng Z., Liu Y. Cell morphological ultrastructural changes in various organs from mice exposed by inhalation to sulfur dioxide. Inhal. Toxicol. 2007; 19(6–7): 543–51. https://doi.org/10.1080/08958370701271373

Qin G., Wang J., Sang N. Sulfur dioxide inhibits expression of mitochondrial oxidative phosphorylation genes encoded by both nuclear DNA and mitochondrial DNA in rat lungs. Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 2017; 24(3): 2527–34. https://doi.org/10.1007/s11356-016-7859-7 https://elibrary.ru/gzrpkg

Sueyoshi S., Miyata Y., Masumoto Y., Ishibashi Y., Matsuzawa S., Harano N., et al. Reduced airway inflammation and remodeling in parallel with mucin 5AC protein expression decreased by s-carboxymethylcysteine, a mucoregulant, in the airways of rats exposed to sulfur dioxide. Int. Arch. Allergy Immunol. 2004; 134(4): 273–80. https://doi.org/10.1159/000079164

Bai J., Meng Z. Effects of sulfur dioxide on apoptosis-related gene expressions in lungs from rats. Regul. Toxicol. Pharmacol. 2005; 43(3): 272–9. https://doi.org/10.1016/j.yrtph.2005.09.002

Riedel F., Krämer M., Scheibenbogen C., Rieger C.H. Effects of SO2 exposure on allergic sensitization in the guinea pig. J. Allergy Clin. Immunol. 1988; 82(4): 527–34. https://doi.org/10.1016/0091-6749(88)90961-x

Park J.K., Kim Y.K., Lee S.R., Cho S.H., Min K.U., Kim Y.Y. Repeated exposure to low levels of sulfur dioxide (SO2) enhances the development of ovalbumin-induced asthmatic reactions in guinea pigs. Ann. Allergy Asthma Immunol. 2001; 86(1): 62–7. https://doi.org/10.1016/S1081-1206(10)62358-7

Li S., Xu Z., Xia J., Qin G., Sang N. Sulfur dioxide induces apoptosis via reactive oxygen species generation in rat cardiomyocytes. Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 2019; 26(9): 8758–67. https://doi.org/10.1007/s11356-019-04319-7 https://elibrary.ru/bpakcs

Qin G., Wu M., Wang J., Xu Z., Xia J., Sang N. Sulfur dioxide contributes to the cardiac and mitochondrial dysfunction in rats. Toxicol. Sci. 2016; 151(2): 334–46. https://doi.org/10.1093/toxsci/kfw048

Woerman A.L., Mendelowitz D. Perinatal sulfur dioxide exposure alters brainstem parasympathetic control of heart rate. Cardiovasc Res. 2013; 99(1): 16–23. https://doi.org/10.1093/cvr/cvt057

Zhang J., Li Z., Qie M., Zheng R., Shetty J., Wang J. Sodium fluoride and sulfur dioxide affected male reproduction by disturbing blood-testis barrier in mice. Food Chem. Toxicol. 2016; 94: 103–11. https://doi.org/10.1016/j.fct.2016.05.017

Li X., Yi H., Wang H. Sulphur dioxide and arsenic affect male reproduction via interfering with spermatogenesis in mice. Ecotoxicol. Environ. Saf. 2018; 165: 164–73. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2018.08.109

Zhang B., Liu C.Y., Meng Z.Q. Study of toxicity on male reproductive system of mice induced by SO2 inhalation. Wei Sheng Yan Jiu. 2005; 34(2): 167–9. (in Chinese)

Zhang J., Zheng F., Liang C., Zhu Y., Shi Y., Han Y., et al. Sulfur dioxide inhalation lowers sperm quality and alters testicular histology via increasing expression of CREM and ACT proteins in rat testes. Environ. Toxicol. Pharmacol. 2016; 47: 47–52. https://doi.org/10.1016/j.etap.2016.09.001

Sang N., Yun Y., Yao G.Y., Li H.Y., Guo L., Li G.K. SO(2)-induced neurotoxicity is mediated by cyclooxygenases-2-derived prostaglandin E(2) and its downstream signaling pathway in rat hippocampal neurons. Toxicol. Sci. 2011; 124(2): 400–13. https://doi.org/10.1093/toxsci/kfr224

Yun Y., Yao G., Yue H., Guo L., Qin G., Li G., et al. SO(2) inhalation causes synaptic injury in rat hippocampus via its derivatives in vivo. Chemosphere. 2013; 93(10): 2426–32. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2013.08.063

Yun Y., Li H., Li G., Sang N. SO2 inhalation modulates the expression of apoptosis-related genes in rat hippocampus via its derivatives in vivo. Inhal. Toxicol. 2010; 22(11): 919–29. https://doi.org/10.3109/08958378.2010.494694

Kilic D. The effects of ageing and sulfur dioxide inhalation exposure on visual-evoked potentials, antioxidant enzyme systems, and lipid-peroxidation levels of the brain and eye. Neurotoxicol. Teratol. 2003; 25(5): 587–98. https://doi.org/10.1016/s0892-0362(03)00090-4

Yargicoglu P., Sahin E., Gümüşlü S., Ağar A. The effect of sulfur dioxide inhalation on active avoidance learning, antioxidant status and lipid peroxidation during aging. Neurotoxicol. Teratol. 2007; 29(2): 211–8. https://doi.org/10.1016/j.ntt.2006.11.002

Grings M., Moura A.P., Amaral A.U., Parmeggiani B., Gasparotto J., Moreira J.C., et al. Sulfite disrupts brain mitochondrial energy homeostasis and induces mitochondrial permeability transition pore opening via thiol group modification. Biochim. Biophys. Acta. 2014; 1842(9): 1413–22. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2014.04.022 https://elibrary.ru/uvzlbl

Котова Е.А., Антоненко Ю.Н. 50 лет изучения протонофоров: разобщение митохондрий как основа терапевтического действия. Acta Naturae. 2022; 14(1): 4–13. https://doi.org/10.32607/actanaturae.11610 https://elibrary.ru/udnkjb

Kotova E.A., Antonenko Yu.N. Fifty years of research on protonophores: mitochondrial uncoupling as a basis for therapeutic action. Acta Naturae. 2022; 14(1): 4–13. https://doi.org/10.32607/actanaturae.11610 https://elibrary.ru/fwkqlo

Zorova L.D., Pevzner I.B., Khailova L.S., Korshunova G.A., Kovaleva M.A., Kovalev L.I., et al. Mitochondrial ATP synthase and mild uncoupling by butyl ester of rhodamine 19, C4R1. Antioxidants (Basel). 2023; 12(3): 646. https://doi.org/10.3390/antiox12030646 https://elibrary.ru/xdnswi

Huang Y., Tang C., Du J., Jin H. Endogenous sulfur dioxide: a new member of gasotransmitter family in the cardiovascular system. Oxid. Med. Cell. Longev. 2016; 2016: 8961951. https://doi.org/10.1155/2016/8961951

Mailloux R.J. Targeted redox regulation α-ketoglutarate dehydrogenase complex for the treatment of human diseases. Cells. 2025; 14(9): 653. https://doi.org/10.3390/cells14090653 https://elibrary.ru/pvyvwt

Tossounian M.A., Zhang B., Gout I. The writers, readers, and erasers in redox regulation of GAPDH. Antioxidants (Basel). 2020; 9(12): 1288. https://doi.org/10.3390/antiox9121288 https://elibrary.ru/outfrp

Li K., Geng Y., Lin B., Xi Z. Molecular mechanisms underlying mitochondrial damage, endoplasmic reticulum stress, and oxidative stress induced by environmental pollutants. Toxicol. Res. (Camb.) 2023; 12(6): 1014–23. https://doi.org/10.1093/toxres/tfad094 https://elibrary.ru/iqgwtb

Phaniendra A., Jestadi D.B., Periyasamy L. Free radicals: properties, sources, targets, and their implication in various diseases. Indian J. Clin. Biochem. 2015; 30(1): 11–26. https://doi.org/10.1007/s12291-014-0446-0

Wang Y., Luo W., Wang Y. PARP-1 and its associated nucleases in DNA damage response. DNA Repair (Amst.). 2019; 81: 102651. https://doi.org/10.1016/j.dnarep.2019.102651 https://elibrary.ru/sdoeha

Moura R.D., Mattos P.D., Valente P.F., Hoch N.C. Molecular mechanisms of cell death by parthanatos: More questions than answers. Genet. Mol. Biol. 2024; 47(Suppl. 1): e20230357. https://doi.org/10.1590/1678-4685-GMB-2023-0357 https://elibrary.ru/kmuxlz

Lv B., Peng H., Qiu B., Zhang L., Ge M., Bu D., et al. Sulphenylation of CypD at cysteine 104: a novel mechanism by which SO2 inhibits cardiomyocyte apoptosis. Front. Cell Dev. Biol. 2022; 9: 784799. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.784799 https://elibrary.ru/xvbuav

Lai Y., Gao F.F., Ge R.T., Liu R., Ma S., Liu X. Metal ions overloading and cell death. Cell Biol. Toxicol. 2024; 40(1): 72. https://doi.org/10.1007/s10565-024-09910-4 https://elibrary.ru/hkafpt

Gonzalez Herrera K.N., Lee J., Haigis M.C. Intersections between mitochondrial sirtuin signaling and tumor cell metabolism. Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 2015; 50(3): 242–55. https://doi.org/10.3109/10409238.2015.1031879

Nguyen T.T., Wei S., Nguyen T.H., Jo Y., Zhang Y., Park W., et al. Mitochondria-associated programmed cell death as a therapeutic target for age-related disease. Exp. Mol. Med. 2023; 55(8): 1595–619. https://doi.org/10.1038/s12276-023-01046-5 https://elibrary.ru/ebemot

The authors declare that there are no conflicts of interest present.