Preview

Токсикологический вестник

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

МЕХАНИЗМЫ ПОВЫШЕНИЯ РЕЗИСТЕНТНОСТИ ОРГАНИЗМА К ИНФЕКЦИИ В РАННЕЙ ФАЗЕ СЕПСИСА У МЫШЕЙ ПОСЛЕ ОСТРОЙ ИНТОКСИКАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИМИ СОЕДИНЕНИЯМИ

https://doi.org/10.36946/0869-7922-2016-5-21-25

Полный текст:

Аннотация

В экспериментах на аутбредных белых мышах установлено, что снижение летальности мышей от сепсиса и уменьшение концентрации в крови провоспалительных цитокинов ФНО- , ИЛ-1 , ИЛ-6 после острой интоксикации фосфорорганическим соединениями (ФОС) обусловлено реализацией холинергического антивоспалительного пути: активацией м1-ацетилхолинорецепторов и 7n-ацетилхолинорецепторов макрофагально-моноцитарной системы. Антивоспалительный эффект после острого отравлении ФОС связан также с возбуждением симпатической нервной системы, 2-адренорецепторов Т-лимфоцитов, макрофагов и моноцитов и последующей редукцией в крови провоспалительных цитокинов.

Об авторах

П. Ф. Забродский
Саратовский филиал НОУ ВПО «Самарский медицинский институт «РЕАВИЗ»
Россия


В. В. Масляков
Саратовский филиал НОУ ВПО «Самарский медицинский институт «РЕАВИЗ»
Россия


М. С. Громов
Саратовский филиал НОУ ВПО «Самарский медицинский институт «РЕАВИЗ»
Россия


Список литературы

1. Забродский П.Ф. Иммунотоксикология фосфорорганических соединений Саратов: Саратовский источник; 2016.

2. Hulse E.J., Davies J.O, Simpson A.J., Sciuto A.M., Eddleston M. Respiratory complications of organophosphorus nerve agent and insecticide poisoning. Implications for respiratory and critical care. Am. J. Respir. Cri.t Care Med. 2014;190(12):1342–54.

3. King A.M., Aaron C.K. Organophosphate and carbamate poisoning. Emerg. Med. Clin. North Am. 2015; 33(1):133–51.

4. Peter J.V., Sudarsan T.I., Moran J.L. Clinical features of organophosphate poisoning: A review of different classification systems and approaches. Indian J. Crit. Care Med. 2014;18(11):735–45.

5. Sawyer T.W., Mikler J., Worek F., Reiter G., Thiermann H., Tenn C. et al. The therapeutic use of localized cooling in the treatment of VX poisoning. Toxicol Lett. 2011;204(1):52–6.

6. Yanagisawa N. The nerve agent sarin: history, clinical manifestations, and treatment. Brain Nerve. 2014;66(5):561–9.

7. Забродский П.Ф. Влияние армина на факторы неспецифической резистентности организма и первичный гуморальный ответ. Фармакол. и токсикол. 1987;49(20):57–60.

8. Забродский П.Ф. Влияние холинергической стимуляции на неспецифическую резистентность организма и систему иммунитета. Иммунология.1995;53(5):62–4.

9. Забродский П.Ф. Изменение антиинфекционной неспецифической резистентности организма под влиянием холинергической стимуляции. Бюл. эксперим. биол. и мед. 1995;119(8):164–7.

10. Забродский П.Ф. Иммунотропные эффекты при обратимом ингибировании холинэстеразы. Иммунология.1996;4: 26–8.

11. Pavlov V.A., Wang H., Czura C.J. Friedman S.G., Tracey K.J. The cholinergic anti-inflammatory pathway: a missing link in neuroimmunomodulation. Mol. Med. 2003;9(5-8):125–34.

12. Martelli D., McKinley M.J., McAllen R.M. The cholinergic anti-inflammatory pathway: a critical review. Auton Neurosci. 2014;182:65-9.

13. Payolla T.B., Lemes S.F., de Fante T., Reginato A., Mendes da Silva C., de Oliveira Micheletti T. et al. High-fat diet during pregnancy and lactation impairs the cholinergic anti-inflammatory pathway in the liver and white adipose tissue of mouse offspring. Mol. Cell Endocrinol. 2016;422:192–202.

14. Rosas-Ballina M., Tracey K.J. Cholinergic control of inflammation. J. Intern. Med. 2009;265(6):663–79.

15. Eftekhari G., Hajiasgharzadeh K., Ahmadi-Soleimani S.M., Dehpour A.R., Semnanian S., Mani A.R. Activation of central muscarinic receptor type 1 prevents development of endotoxin tolerance in rat liver. Eur. J. Pharmacol. 2014;740:436-41.

16. Bonaz B.L., Bernstein C.N. Brain-gut interactions in inflammatory bowel disease. Gastroenterology. 2013;144(1):36–49.

17. Egea J., Buendia I., Parada E., Navarro E., León R, Lopez M.G. et al. Anti-inflammatory role of microglial alpha7 nAChRs and its role in neuroprotection. Biochem. Pharmacol. 2015; 97(4): 463–72.

18. Kox M., Pickkers P. Modulation of the innate immune response through the vagus nerve. Nephron. 2015;131(2):79–84.

19. Song D.J., Huanq X.Y., Ren L.C. Yang X.H., Xiao M.Z., Wang S. Effect of lentiviral vector encoding on triggering receptor expressed on myeloid cells 1 on expression of inflammatory cytokine in septic mice infected by Bacteroides fragilis. Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2009;25(1):36–41.

20. Jones C.K. , Brady A.E., Davis A.A, Xiang Z., Bubser M., Tantawy M.N. et al. Novel selective allosteric activator of the M1 muscarinic acetylcholine receptor regulates amyloid processing and produces antipsychotic-like activity in rats. J. Neurosci. 2008;28(41):10422–33.

21. Sitapara R.A., Antoine D.J., Sharma L., Patel V.S., Ashby C.R. Jr, Gorasiya S. et al. Mol. Med. 2014;20:238–47.

22. Norman G.J., Morris J.S., Karelina K., Weil Z.M., Zhang N., Al-Abed Y. et al. Cardiopulmonary arrest and resuscitation disrupts cholinergic anti-inflammatory processes: a role for cholinergic 7 nicotinic receptors. J. Neurosci. 2011;31(9):3446– 52.


Для цитирования:


Забродский П.Ф., Масляков В.В., Громов М.С. МЕХАНИЗМЫ ПОВЫШЕНИЯ РЕЗИСТЕНТНОСТИ ОРГАНИЗМА К ИНФЕКЦИИ В РАННЕЙ ФАЗЕ СЕПСИСА У МЫШЕЙ ПОСЛЕ ОСТРОЙ ИНТОКСИКАЦИИ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИМИ СОЕДИНЕНИЯМИ. Токсикологический вестник. 2016;(5):21-25. https://doi.org/10.36946/0869-7922-2016-5-21-25

For citation:


Zabrodskii P.F., Maslyakov V.V., Gromov M.S. MECHANISMS OF INCREASED RESISTANCE TO INFECTION IN THE EARLY PHASE OF SEPSIS IN MICE AFTER ACUTE INTOXICATION WITH ORGANOPHOSPHORUS COMPOUNDS. Toxicological Review. 2016;(5):21-25. (In Russ.) https://doi.org/10.36946/0869-7922-2016-5-21-25

Просмотров: 11


ISSN 0869-7922 (Print)