ПОТЕНЦИАЛЬНЫЕ НАПРАВЛЕНИЯ СОВЕРШЕНСТВОВАНИЯ АНТИДОТНОЙ ТЕРАПИИ ОТРАВЛЕНИЙ ЦИАНИДАМИ
Аннотация
В статье, на основании анализа литературы, обсуждаются перспективные направления разработки антидотной профилактики и терапии острых отравлений цианидами. На роль потенциальных антидотов цианидов, эффективных и безопасных при внутримышечной и внутрикостной инъекциях, ингаляционной и пероральной доставке, претендуют химические соединения, опосредующие антицианидную активность за счет стимуляции основных механизмов детоксикации эндогенного цианида: сульфанген, кобинамид, α-кетоглутаровая кислота.
Ключевые слова
Об авторах
В. Д. Гладких
ФГУП НПЦ «Фармзащита» Федерального медико-биологического агентства
Россия
Россия
Гладких Вадим Дмитриевич, доктор медицинских наук, профессор, заместитель директора по науке
141402, г. Химки
Г. В. Вершинина
ФГУП НПЦ «Фармзащита» Федерального медико-биологического агентства
Россия
Россия
Вершинина Галина Васильевна, научный сотрудник научно-организационного отдела
141402, г. Химки
Список литературы
1. Hall A. H., Saiers J., Baud F. Which cyanide antidote? // Crit. Rev. Toxicol. — 20— — 541–52.
2. Baud F. Cyanide: critical issues in diagnosis and treatment // Human Exp. Toxicol. — 20— — 191–201.
3. Nagasawa H. T., Goon D. J., Crankshaw D. L. Novel, orally effective cyanide antidotes // J. Med. Chem. — 20— Vol. 50, No. — P. 6462–6464.
4. Brenner M., Lim J. G., Lee J., et al. Sulfanegen sodium treatment in a rabbit model of sub-lethal cyanide toxicity // Toxicol. Appl. Pharmacol. — 20— 2— 269–76.
5. Belani K. G., Singh H., Beebe D. S., et al. Cyanide toxicity in juvenile pigs and its reversal by a new prodrug, sulfanegen sodium // Anesth. Analg. — 20— 114 (5). — 956–61.
6. Clemedson C. J., Hultman H. I., Sorbo B. The antidote effect of some sulfur compounds and rhodanese in experimental cyanide poisoning // Acta Physiol. Scand. — 19— — 245–51.
7. Way J. L, Cannon E., Leung P., et al. Antagonism of cyanide intoxication with rhodanese encapsulated resealed erythrocytes // Adv. Biosci. — 19— — 207–11.
8. Petrikovics, I., Cannon, E. P., McGuinn, W. D., et al. Cyanide antagonism with carrier erythrocytes and organic thiosulfonates // Fundam. Appl. Toxicol. — 19— — 86–93.
9. Petrikovics I., Budal M., Baskin S. I., et al. Characterization of liposomal vesicles encapsulating rhodanese for cyanide antagonism // Drug. Deliv. — 20— — 312–19.
10. Szczepkowski T. W., Wood J. L. The cystathionase rhodanese system // Biochim. Biophys. Acta. — 19— 1— 469–78.
11. Baskin S. I., Porter D. W., Rockwood G. A., et al. In vitro and in vivo comparison of sulfur donors as antidotes to acute cyanide intoxication // J. Appl. Toxicol. — 19— 19 (3). — P. 173–182.
12. Chan A., Balasubramanian M., Blackledge W., et al. Cobinamide is superior to other treatments in a mouse model of cyanide poisoning // Clin. Toxicol. (Phila). — 20— 709–17.
13. Hayward G. C., Hill H. A. O., Pratt J. M., et al. The chemistry of vitamin BPart IV: The thermodynamic trans effect // J. Chem. Soc. — 19— 6485–93.
14. Broderick K. E., Potluri P., Zhuang S., et al. Cyanide detoxification by the cobalamin precursor cobinamide // Exp. Biol. Med. Maywood. — 20— 2— 641–9.
15. Chan A., Crankshaw D. L., Monteil A., et al. The combination of cobinamide and sulfanegen is highly effective in mouse models of cyanide poisoning // Clin. Toxicol. (Phila). — 20— — 366–73.
16. Brenner M., Kim J. G., Mahon S. B., et al. Intramuscular cobinamide sulfite in a rabbit model of sublethal cyanide toxicity // Ann. Emerg. Med. — 20— — 352–62.
17. Brenner M., Mahon S. B., Lee J., et al. Comparison of cobinamide to hydroxocobalamin in reversing cyanide physiologic effects in rabbits using diffuse optical spectroscopy monitoring // J. Biomed. Opt. — 20— — 017001.
18. Patent № 5674904, Method for the treatment of cyanide poisoning, Oct. 7, 1997.
19. Schwartz C., Morgan R. L., Way L. M. et al. Antagonism of cyanide intoxication with sodium pyruvate // Toxicol. Appl. Pharmacol. — 19— Vol. — P. 437–441.
20. Norris J. C., Utley W. A., Hume A. S. Mechanism of antagonising cyanide induced lethality by α-ketoglutarate acid // Toxicology. — 19— — 3–9.
21. Hume A. S., Moore S. J., Hume A. T. Effects of alpha-ketoglutaric acid on the distribution of cyanide and acidosis associated with cyanide intoxication // Toxicologist. — 19—— P. 98.
22. Moore S. J., Norris J. C., Ho I. K., Hume A. S. The efficacy of α-ketoglutaric acid in the antagonism of cyanide intoxication // Toxicol. Appl. Pharmacol. — 19— — 40–4.
23. Kravzov J., Rios C, Altagracia M., Jimenez D. Comparison of cobalt edetate and alpha-ketoglutarate as antidotes against cyanide intoxication in mice // Proc. West. Pharmacol. Soc. — 19— — 43–4.
24. Bhattacharya R., Satpute R. M., Hariharakrishnan J., et al. Acute toxicity of some synthetic cyanogens in rats and their response to oral treatment with alphaketoglutarate // Food. Chem. Toxicol. — 20— — 2314–20.
25. Bhattacharya R., Niranjan L. Protective efficacy of various carbonyl compounds and their metabolites, and nutrients against acute toxicity of some cyanogens in rats: biochemical and physiological studies// Interdisciplinary Toxicology. — 20— Vol. 10 (1). — 1–10.
26. Tulsawani R. K., Kumar D., Bhattacharya R. Effect of pretreatment of α-ketoglutarate on cyanide-induced toxicity and alterations in various physiological variables in rodents // Biomed. Environ. Sci. — 20— — 56–63.
27. Mittal G., Singh T., Kumar N., et al. Radiolabeling and dose fixation study of oral alpha-ketoglutarate as a cyanide antidote in healthy human volunteers // Clin. Toxicol. — 20— — 509–15.
28. Niknahad H., Khan S., Sood C., O’Brien P. Prevention of cyanideinduced cytotoxicity by nutrients in isolated rat hepatocytes // Toxicol. Appl. Pharmacol. —19— 1— 271–9.
29. Hariharakrishnan J., Satpute R. M., Prasad G. B. K. S., Bhattacharya R. Oxidative stress mediated cytotoxicity of cyanide in LLC–MK2 cells and its attenuation by Alpha-ketoglutarate and N-acetyl cysteine // Toxicol. Lett. — 20— 1— 132–41.
30. Hariharakrishnan J., Satpute R. M., Bhattacharya R. Cyanideinduced changes in the levels of neurotransmitters in discrete brain regions of rats and their response to oral treatment with
31. α-ketoglutarate // Indian J. Exp. Biol. — 20— — 731–6.
32. Bhattacharya R., Tulsawani R. K. In vitro and in vivo evaluation of various carbonyl compounds against cyanide toxicity with particular reference to alpha-ketoglutaric acid // Drug Chem. Toxicol. — 20— — 149–61.
33. Satpute R. M., Hariharakrishnan J., Bhattacharya R. Effect of alpha-ketoglutarate and N-acetyl cysteine on cyanideinduced oxidative stress mediated cell death in PC12 cells
34. // Toxicol. Ind. Health. — 20— — 297–308.
35. Satpute R. M., Hariharakrishnan J., Lomash V., et al. Oxidative stress and tissue pathology caused by subacute exposure to ammonium acetate in rats and their response to treatments with alpha-ketoglutarate and N-acetyl cysteine // Toxicol. Ind. Health. — 20— DOI:10.1177/0748233712448117.
Рецензия
Для цитирования:
Гладких В.Д., Вершинина Г.В. ПОТЕНЦИАЛЬНЫЕ НАПРАВЛЕНИЯ СОВЕРШЕНСТВОВАНИЯ АНТИДОТНОЙ ТЕРАПИИ ОТРАВЛЕНИЙ ЦИАНИДАМИ. Токсикологический вестник. 2019;(3):46-50. https://doi.org/10.36946/0869-7922-2019-3-46-50
For citation:
Gladkikh V.D., Vershinina G.V. POTENTIAL DIRECTIONS OF THE IMPROVEMENT OF ANTIDOTE THERAPY OF CYANIDE POISONING. Toxicological Review. 2019;(3):46-50. (In Russ.) https://doi.org/10.36946/0869-7922-2019-3-46-50
Просмотров: 723
Послать статью по эл. почте 