Открытый доступ
Только для подписчиков
ИЗУЧЕНИЕ СОСТАВА ЛИПИДНЫХ ПИГМЕНТОВ БЕЛОМОРСКОЙ ВОДОРОСЛИ SACCHARINA LATISSIMA МЕТОДАМИ ТСХ И МАЛДИ-МС
Аннотация
Изучен качественный состав важнейших биологически активных липидных веществ – ка ротиноидов и производных хлорофилла беломорской водоросли ламинарии сахаристой (Saccharina latissima). Экстракт липидов разделяли методом тонкослойной хроматографии (ТСХ) и исследовали методом матрично-ассоциированной лазерной десорбции-ионизации с масс-спектрометрическим анализом (МАЛДИ-МС). В составе экстракта были обнаружены фукоксантин, фукоксантинол, феофитин а, феофорбид а, а также другие каротиноиды и хлорофиллы, в том числе не описанные в литературе. Полученные результаты, существенно расширяющие сведения о составе пигментов S. latissima, могут быть использованы для стандартизации сырья и препаратов на основе данной водоросли.
Ключевые слова
бурые водоросли,
S. Latissimi,
липиды,
пигменты,
каротиноиды,
хлорофиллы,
тонкослойная хроматография,
МАЛДИ-МС
Об авторах
К. А. Краснов
ФГБУН «Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства»
Россия
Россия
Краснов Константин Андреевич, кандидат химических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории медицинских проблем химической безопасности
192019, г. Санкт- Петербург
А. С. Гладчук
ФГБУН «Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства»; Санкт-Петербургский государственный университет
Россия
Россия
Гладчук Алексей Сергеевич, младший научный сотрудник лаборатории химической и токсикологической диагностики химико-аналитического отдела; аспирант
192019, г. Санкт- Петербург
199034, г. Санкт-Петербург
М. Л. Александрова
ФГБУН «Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства»
Россия
Россия
Александрова Марина Леонидовна, кандидат химических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории химической и токсикологической диагностики химико-аналитического отдела
192019, г. Санкт- Петербург
О. А. Кельциева
Институт аналитического приборостроения Российской академии наук; ФГБУН «Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства»
Россия
Россия
Кельциева Ольга Александровна, научный сотрудник лаборатории биомедицинской масс-спектрометрии; научный сотрудник лаборатории химической и токсикологической диагностики химикоаналитического отдела
190103, г. Санкт-Петербург
192019, г. Санкт- Петербург
М. А. Зайцева
ФГБУН «Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства»
Россия
Россия
Зайцева Мария Анатольевна, кандидат медицинских наук, заведующий лаборатории лекарственной токсикологии
192019, г. Санкт- Петербург
М. В. Мельникова
ФГБУН «Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства»
Россия
Россия
Мельникова Маргарита Викторовна, младший научный сотрудник лаборатории лекарственной токсикологии
192019, г. Санкт- Петербург
В. Л. Рейнюк
ФГБУН «Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства»
Россия
Россия
Рейнюк Владимир Леонидович, доктор медицинских наук, доцент, заместитель директора по научной работе
192019, г. Санкт- Петербург
Е. П. Подольская
ФГБУН «Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства»; Институт аналитического приборостроения Российской академии наук
Россия
Россия
Подольская Екатерина Петровна, кандидат химических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории химической и токсикологической диагностики химико-аналитического отдела; ведущий научный сотрудник лаборатории биомедицинской масс-спектрометрии
192019, г. Санкт- Петербург
190103, г. Санкт-Петербург
Список литературы
1. Боголицин К. Г., Каплицын П. А., Ульяновский Н. В., Пронина О. А. Комплексное исследование химического состава бурых водорослей Белого моря. Химия растительного сырья. 2012; 4: 153-160.
2. Боголицин К. Г., Каплицын П. А. Перспективы использования сверхкритической флюидной экстракции для получения биологически активных веществ из бурых водорослей арктических морей. В кн.: Материалы Всероссийской школы – конференции молодых учёных «Сверхкритические флюидные технологии в решении экологических проблем. Экстракция растительного сырья». Архангельск, 25 – 28 июня 2012: 79-86.
3. Stengel D.B., Connan S., Popper Z.A. Algal chemodiversity and bioactivity: sources of natural variability and implications for commercial application. Biotechnol Adv. 2011; 29(5): 483-501.
4. Vadalà M., Palmieri B. From algae to “functional foods”. Clin Ter. 2015; 166(4): e281-300 (in Italian).
5. Gammone MA., Riccioni G., D’Orazio N. Marine Carotenoids against Oxidative Stress: Effects on Human Health. Mar. Drugs. 2015; 13(10): 6226-6246.
6. Martin L.J. Fucoxanthin and Its Metabolite Fucoxanthinol in Cancer Prevention and Treatment. Mar. Drugs. 2015; 13(8): 4784-4798.
7. Maeda H. Nutraceutical effects of fucoxanthin for obesity and diabetes therapy: a review. J. Oleo Sci. 2015; 64(2): 125-32.
8. Abidov M., Ramazanov Z., Seifulla R., Grachev S. The effects of Xanthigen in the weight management of obese premenopausal women with non-alcoholic fatty liver disease and normal liver fat. Diabetes Obes Metab. 2010; 12(1): 72-81.
9. Fujiwara T., Nishida N., Nota J., Kitani T., Aoishi K., Takahashi H., et.al. Efficacy of chlorophyll c2 for seasonal allergic rhinitis: single-center double-blind randomized control trial. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2016; 273(12): 4289-4294.
10. Islam M.N., Ishita I.J., Jin S.E., Choi R.J., Lee C.M., Kim Y.S., et.al. Antiinflammatory activity of edible brown alga Saccharina japonica and its constituents pheophorbide a and pheophytin a in LPSstimulated RAW 264.7 macrophage cells. Food Chem Toxicol. 2013; 55: 541-548.
11. Лозовская М.Е. Эффективность использования ламинарии у подростков при комплексном лечении туберкулёза лёгких. Вопросы питания. 2005; 74(1): 40-43.
12. El-Nakeeb M.A., Jousef R.T. Antimicrobial activity of sodium cooper chlorophyllin. Pharmazie. 1974; 29: 48-50.
13. Kamei Y., Aoki M.A. Сhlorophyll c2 analogue from the marine brown alga Eisenia bicyclis inactivates the infectious hematopoietic necrosis virus, a fish rhabdovirus. Arch. Virol. 2007; 152(5): 861-869.
14. Муравьева Е.А. Комплексная технология получения экстрактивных БАВ из бурых водорослей белого моря. Рыбпром. 2010; 3: 54-57.
15. Fu W., Magnúsdóttir M., Brynjólfson S., Palsson B.Ø., Paglia G. UPLC-UVMS(E) analysis for quantification and identification of major carotenoid and chlorophyll species in algae. Anal Bioanal Chem. 2012; 404(10): 3145-3154.
16. Milenković S.M., Zvezdanović J.B., Anđelković T.D., Marković D.Z. The identification of chlorophyll and its derivatives in the pigment mixtures: HPLC-chromatography, visible and mass spectroscopy studies. Advanced technologies. 2012; 1(1): 16-24.
17. Murador D.C., Salafia F., Zoccali M., Martins P.L.G., Ferreira A.G., Dugo P., et.al. Green Extraction Approaches for Carotenoids and Esters: Characterization of Native Composition from Orange Peel. Antioxidants (Basel). 2019; 8(12): E613.
Рецензия
Для цитирования:
Краснов К.А., Гладчук А.С., Александрова М.Л., Кельциева О.А., Зайцева М.А., Мельникова М.В., Рейнюк В.Л., Подольская Е.П. ИЗУЧЕНИЕ СОСТАВА ЛИПИДНЫХ ПИГМЕНТОВ БЕЛОМОРСКОЙ ВОДОРОСЛИ SACCHARINA LATISSIMA МЕТОДАМИ ТСХ И МАЛДИ-МС. Токсикологический вестник. 2020;(5):50-56. https://doi.org/10.36946/0869-7922-2020-5-50-56
For citation:
Krasnov К.А., Gladchuk A.S., Alexandrova M.L., Keltsieva O.A., Zaytseva M.A., Melnikova M.V., Reinyuk V.L., Podolskaya Е.P. STUDY OF THE LIPID PIGMENT COMPOSITION IN THE WHITE SEA ALGAE SACCHARINA LATISSIMA USING TLC AND MALDI-MS. Toxicological Review. 2020;(5):50-56. (In Russ.) https://doi.org/10.36946/0869-7922-2020-5-50-56
Просмотров: 581
Послать статью по эл. почте 