Preview

Токсикологический вестник

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

ВЛИЯНИЕ ХРОНИЧЕСКОГО ИНГАЛЯЦИОННОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ МАЛЫХ ДОЗ АЛИФАТИЧЕСКИХ УГЛЕВОДОРОДОВ С6-С10 НА МЕТАБОЛИЧЕСКИЕ ПРОФИЛИ ГОЛОВНОГО МОЗГА И ПЕЧЕНИ КРЫС

https://doi.org/10.36946/0869-7922-2017-3-31-41

Полный текст:

Аннотация

Впервые исследовано хроническое ингаляционное воздействие низких концентраций алифатических углеводородов (УВ) на метаболические профили низкомолекулярных органических соединений, в том числе свободных (СЖК) и этерифицированных (ЭЖК) жирных кислот головного мозга и печени крыс. В качестве аналитических методов были использованы газовая и жидкостная хроматомасс-спектрометрия. Перечень УВ включает гексан, гептан, октан, нонан и декан в различных соотношениях. Выявлены изменения профилей низкомолекулярных соединений головного мозга при воздействии смеси УВ в концентрации 160 ± 20.5 мг/м3 в течение 90 суток, в то время как воздействие смеси УВ в более низких концентрациях - 31.4 ± 5.6 мг/м3 и 5.2 ± 1.08 мг/м3, приводит лишь к незначительным изменениям профилей. Выявлено значительное повышение концентраций лизофосфолипидов, в основном лизофосфатидилхолинов, в экстракте из головного мозга и плазме крови. Повышение содержания лизофосфолипидов в тканях мозга можно рассматривать как следствие деструкции клеточных мембран, характерной для нейродегенеративных процессов. В то же время, повышение концентрации лизофосфатидилхолинов в мозге сопровождается статистически значимым уменьшением концентрации глицерол-3-фосфата и не сопровождается изменениями концентраций глицерофосфохолина, глицерофосфоэтаноламина, холина, ацетилхолина, СЖК или лизофосфатидной кислоты. Показано, что концентрации лизофосфатидилхолинов и лизофосфатидилэтаноаминов, отнесенные к концентрациям глицерофосфохолина и глицерофосфоэтаноламина в плазме крови, могут служить потенциальными маркерами влияния УВ на головной мозг.

Об авторах

А. И. Уколов
ФГУП «Научно-исследовательский институт гигиены, профпатологии и экологии человека» ФМБА России
Россия


Е. Д. Кессених
ФГУП «Научно-исследовательский институт гигиены, профпатологии и экологии человека» ФМБА России
Россия


Т. И. Орлова
ФГУП «Научно-исследовательский институт гигиены, профпатологии и экологии человека» ФМБА России
Россия


А. С. Радилов
ФГУП «Научно-исследовательский институт гигиены, профпатологии и экологии человека» ФМБА России
Россия


Н. В. Гончаров
ФГУП «Научно-исследовательский институт гигиены, профпатологии и экологии человека» ФМБА России
Россия


Список литературы

1. Spencer P.S., Schaumburg H.H., Sabri M.I., Veronesi B. The enlarging view of hexacarbon neurotoxicity. Crit. Rev. Toxicol. 1980; 7: 279-356.

2. Huang C.C. Polyneuropathy induced by n-hexane intoxication in Taiwan. Acta Neurol. Taiwan. 2008; 17: 3-

3. Уколов А.И., Мигаловская Е.Д., Радилов А.С. Хроматомасс-спектрометрическое исследование биологических образцов крыс подвергавшихся воздействию алифатических углеводородов с числом атомов углерода от 6 до MEDLINE.RU. 2015; 16: 335-343.

4. Simonati A., Rizzuto N., Cavanagh J.B. The Effects of 2,5-Hexanedione on Axonal Regeneration After Nerve Crush in the Rat. Acta Neuropathol. 1983; 59: 216-224.

5. Pereira M.E., Adams A.I.H., Silva N.S. 2,5-Hexanedione inhibits rat brain acetylcholinesterase activity in vitro. Toxicol. Lett. 2004; 146: 269-274.

6. Tshala-Katumbay D.D., Palmer V.S., Kayton R.J., Sabri M.I., Spencer P.S. A new murine model of giant proximal axonopathy. Acta Neuropathol. 2005; 109: 405-410.

7. Yokoyama K., Araki S., Akabayashi A., Kato T., Sakai T., Sato H. Decrease of Glucose Utilization Rate in the Spinal Cord of Experimental 2,5-Hexanedione Poisoning Rats: Application of Microdetermination Technique. Industrial Health. 2000; 38: 189-194.

8. Гончаров Н.В., Уколов А.И., Орлова Т.И., Мигаловская Е.Д., Войтенко Н.Г. Метаболомика: на пути интеграции биохимии, аналитической химии, информатики. Успехи совр. биол. 2015; 11: 3-17.

9. Уколов А.И., Кессених Е.Д., Радилов А.С., Гончаров Н.В. Токсикометаболомика: поиск маркеров хронического воздействия низких концентраций алифатических углеводородов. Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 201: 24-32.

10. Уколов А.И., Орлова Т.И., Савельева Е.И., Радилов А.С. Хроматомасс-спектрометрическое определение свободных жирных кислот в плазме крови и моче с использованием экстрактивного алкилирования. Журнал аналитической химии. 2015; 9: 968-975.

11. Орлова Т.И., Уколов А.И., Савельева Е.И., Радилов А.С. Определение свободных и этерифицированных жирных кислот в плазме крови методом газовой хроматоматографии с масс-селективным детектированием. Аналитика и контроль. 2015; 2: 183-188.

12. Bhatt A., Khan S., Pandya K.P. Effect of Hexacarbons on Selected Lipids in Developing Rat Brain and Peripheral Nerves. J. Appl. Tox. 1988; 8; 1: 53-57.

13. Gillies P.J., Norton R.M., Bus J.S. Inhibition of sterologenesis but not glycolysis in 2.5-hexanedione induced distal axonopathy in the rat. Toxicol. Appl. Pharm. 199: 287-292.

14. Taranova N.P. Intensity of acetate-2- 14C incorporation into brain and spinal cord phospholipids and cholesterol of healthy guinea pigs and those poisoned with Tri-o-cresylphosphate. Bull. Exp. Biol. Med. 1976; 85: 427-429.

15. Kharroubi W., Dhibi M., Mekni M., Haouas Z., Chreif I., Neffati F., Hammami M., Sakly R. Sodium arsenate induce changes in fatty acids profiles and oxidative damage in kidney of rats. Environ Sci Pollut Res Int. 2014; 20: 12040- 12049.

16. Cocchi M. Tonello L. Gabrielli F. (2011). Platelet, Fatty Acids, Membrane Viscosity, Depression and Ischemic Heart Disease - Biological-Molecular Path, with Medical-Anthropology Insights. In: Coronary Angiography – Advances in Noninvasive Imaging Approach for Evaluation of Coronary Artery Disease. Editor: Branislav Baskot. InTech Ed. ISBN 978-953-307-675-1.

17. Damiano F., Gnoni G.V., Siculella L. Functional analysis of rat liver citrate carrier promoter: differential responsiveness to polyunsaturated fatty acids. Biochem J. 2009; 42: 561-71.

18. Su Z., Yan X.D., Li Y.J., Chen X. Effects of hydrogen peroxide on membrane fluidity and Ca(2+)-transporting ATPase activity of rabbit myocardial sarcoplasmic reticulum. Acta pharmacologica Sinica. 1993; 5: 393-396.

19. Yehuda S., Rabinovitz S., Carasso R.L., Mostofsky D.I. The role of polyunsaturated fatty acids in restoring the aging neuronal membrane. Neurobiol Aging. 2002; 5: 843-853.

20. Adedara I.A., Abolaji A.O., Odion B.E., Okwudi I.J., Omoloja A.A., Farombi E.O. Impairment of Hepatic and Renal Functions by 2,5-Hexanedione Is Accompanied by Oxidative Stress in Rats J. Toxicol. 2014; 2014: 1-9.

21. Pereira M.E., Bordignon A.M., Bürger C., Huang C.I., Rocha J.B. Long-term treatment with 2,5-hexanedione has no effect on the specific activity of some brain and liver glycolytic enzymes of adult rats. Braz. J. Med. Biol. Res. 1924; 7: 735-740.

22. Goel S.K., Rao G.S., Pandya K.P. Hepatotoxic effects elicited by n-hexane or n- heptane. J. Appl. Toxicol. 1988; 2: 81-84.

23. Conquer J.A., Martin J.B., Tummon I., Watson L.T.F. Fatty acid analysis of blood serum, seminal plasma. Lipids. 1999; 34: 793-799.

24. Разработка предельно допустимой концентрации (ПДК) смесей предельных углеводородов С1-С5 и С6-С10 в атмосферном воздухе населенных мест // Отчет о НИР / ФГУП «НИИ ГПЭЧ» ФМБА России, рук. д.м.н., проф. Радилов А.С. Санкт-Петербург, 2015 г.

25. Dotan Y., Lichtenberg D., Pinchuk I. Lipid peroxidation cannot be used as a universal criterion of oxidative stress. Prog Lipid Res. 2004; 43: 200-227.

26. Suciu M., Gruia A.T., Nica D.V., Azghadi S.M., Mic A.A., Mic F.A. Acetaminophen-induced liver injury: implications for temporal homeostasis of lipid metabolism and eicosanoid signaling pathway. Chemico-Biological Interactions. 2015; 242: 335-344.

27. Al-Assaf A.H. Preventive Effect of Corosolic Acid on Lipid Profile Against Carbon Tetrachloride-Induced Hepatotoxic Rats. Pakistan Journal of Nutrition. 2013; 8: 748-752.

28. Kosicek M., Hecimovic S. Phospholipids and Alzheimer’s Disease: Alterations, Mechanisms and Potential Biomarkers. Int. J. Mol. Sci. 2013; 14: 1310-1322.

29. Sun G.Y., Huang H.M., Chandrasekhar R., Lee D.Z., Sun A.Y. Effects of chronic ethanol administration on rat brain phospholipid metabolism. J. Neurochem. 1987; 48: 974-980.

30. Morell P., Quarles R.H. Characteristic Composition of Myelin. In: Siegel GJ, Agranoff BW, Albers RW, et al., editors. Basic Neurochemistry: Molecular, Cellular and Medical Aspects. 6th edition. Philadelphia: Lippincott-Raven; 1999.

31. Klein J. Membrane breakdown in acute and chronic neurodegeneration: focus on choline-containing phospholipids. J Neural Transm. 2000; 107: 1027-1063.

32. Fonteh A.N., Chiang J., Cipolla M., Hale J., Diallo F., Chirino A., Arakaki X., Harrington M.G. Alterations in cerebrospinal fluid glycerophospholipids and phospholipase A2 activity in Alzheimer’s disease. J Lipid Res. 2013; 10: 2884-2897.

33. Yung Y.C., Stoddard N.C., Mirendil H., Chun J. Lysophosphatidic Acid signaling in the nervous system. Neuron. 2015; 4: 669-682.

34. Matas-Rico E., Moolenaar W.H., Oude Elferink R.P., Perrakis A. Steroid binding to Autotaxin links bile salts and lysophosphatidic acid signalling. Nat Commun. 2016; 7: 11240-11248.

35. Divecha N., Irvine R.F. Phospholipid signalling. Cell. 1995; 80: 269-278.

36. O’Regan M.H., Alix S., Woodbury D.J. Phospholipase A2-evoked destabilization of planar lipid membranes. Neurosci Lett. 1996; 202: 201-203.

37. Lauber K., Bohn E., Kröber M., Xiao Y., Blumenthal S. Apoptotic Cells Induce Migration of Phagocytes via Caspase-3- Mediated Release of a Lipid Attraction Signal. Cell. 2003; 16: 717-730.

38. Munder P.G., Modolell M., Andreesen R., Weltzien H.U., Westphal O. Lysophosphatidylcholine (lysolecithin) and its synthetic analogues. Immunemodulating and other biologic effects. Springer Seminars in Immunopathology. 1979; 2: 187-203.

39. Bazan N.G., de Turco E.B., Allan G. Mediators of injury in neurotrauma: intracellular signal transduction and gene expression. J Neurotrauma. 1912: 791-814.

40. Pasini A.F., Stranieri C., Pasini A., Vallerio P., Mozzini C., Solani E., Cominacini M., Cominacini L., Garbin U. Lysophosphatidylcholine and Carotid Intima-Media Thickness in Young Smokers: A Role for Oxidized LDL-Induced Expression of PBMC Lipoprotein-Associated Phospholipase A2? PLoS One. 2013; 12: e83092.

41. Bazan N.G. Effects of ischemia and electroconvulsic shock on free fatty acid pool in the brain. Biochim Biophys Acta. 19218: 1-10.

42. Söderberg M., Edlund C., Kristensson K., Dallner G. Fatty acid composition of brain phospholipids in aging and Alzheimer’s disease. Lipids 1991; 26: 421-425.

43. Andreoli V.M., Maffei F., Tonon G.C., Zibetti A. Significance of plasma lysolecithin in patients with multiple sclerosis: a longitudinal study. J. Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 1973; 36: 661-667.

44. Войтенко Н.Г., Прокофьева Д.С., Гончаров Н.В. Проблемы диагностики при интоксикации фосфорорганическими соединениями. Токс. Вестн. 2013; 5: 2-6.


Для цитирования:


Уколов А.И., Кессених Е.Д., Орлова Т.И., Радилов А.С., Гончаров Н.В. ВЛИЯНИЕ ХРОНИЧЕСКОГО ИНГАЛЯЦИОННОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ МАЛЫХ ДОЗ АЛИФАТИЧЕСКИХ УГЛЕВОДОРОДОВ С6-С10 НА МЕТАБОЛИЧЕСКИЕ ПРОФИЛИ ГОЛОВНОГО МОЗГА И ПЕЧЕНИ КРЫС. Токсикологический вестник. 2017;(3):31-41. https://doi.org/10.36946/0869-7922-2017-3-31-41

For citation:


Ukolov A.I., Kessenikh E.D., Orlova T.I., Radilov A.S., Goncharov N.V. IMPACT ОF CHRONIC INHALATION OF LOW DOSES OF ALIPHATIC HYDROCARBONS C6-C10 ON METABOLIC PROFILES OF RATS BRAIN AND LIVER. Toxicological Review. 2017;(3):31-41. (In Russ.) https://doi.org/10.36946/0869-7922-2017-3-31-41

Просмотров: 32


ISSN 0869-7922 (Print)