Preview

Токсикологический вестник

Расширенный поиск

Периферическая нейротоксичность химиотерапевтических препаратов – ингибиторов микротрубочек. Часть 1. История происхождения таксанов, механизм терапевтического действия, клиническая картина (обзор литературы)

https://doi.org/10.47470/0869-7922-2026-34-4-285-293

EDN: kbrpdu

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Химиоиндуцированная периферическая полинейропатия (ХИПН) – одно из наиболее распространённых осложнений противоопухолевой терапии, обусловливающее раннюю её приостановку или снижение дозы препарата и представляющая собой серьёзную проблему, так как на настоящий момент не существует эффективных методов профилактики и лечения данного синдрома.

В обзоре обобщены сведения об эпидемиологии, клинической картине болезни, а также рассмотрены особенности механизма противоопухолевого действия таксанов.

Таксаны – противоопухолевые препараты, воздействующие на микротрубочки, представляющие собой высокодинамичные структуры цитоскелета. Одним из наиболее часто используемых и нейротоксичных препаратов из данной группы является паклитаксел. Связываясь с внутренней поверхностью микротрубочек вблизи нуклеотидсвязывающего участка β-тубулина, паклитасел ингибирует деполимеризацию тубулина, что ведёт к нарушению формирования митотического веретена и блокаде клеточного цикла в опухолевых клетках в фазе G2/M, остановке митоза и запуску апоптотической программируемой клеточной гибели. Большое значение придаётся и неапоптотической клеточной смерти, модулируемой митохондриями. Терапевтическая активность паклитаксела зависит также от его влияния на различные клеточные популяции, присутствующие в микроокружении опухоли. Клиническая картина токсического воздействия паклитаксела на периферическую нервную систему характеризуется двусторонней дистальной симметричной аксональной нейропатией. Описаны варианты клинического течения болезни, включающие феномен персистирующей нейропатии.

Участие авторов:
Саватеева-Любимова Т.Н. – подбор и анализ литературы, написание текста, утверждение окончательного варианта статьи, ответственность за целостность всех её частей;
Сивак К.В., Стосман К.И. – редактирование.

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов в связи с публикацией данной статьи.

Финансирование. Работа выполнена без финансовой поддержки.

 Поступила в редакцию: 05 мая 2026 / Поступила после исправления: 02 июня 2026 / Принята к печати: 03 августа 2026 / Опубликована: 16 сентября 2026

Для цитирования:


Саватеева-Любимова Т.Н., Сивак К.В., Стосман К.И. Периферическая нейротоксичность химиотерапевтических препаратов – ингибиторов микротрубочек. Часть 1. История происхождения таксанов, механизм терапевтического действия, клиническая картина (обзор литературы). Токсикологический вестник. 2026;34(4):285-293. https://doi.org/10.47470/0869-7922-2026-34-4-285-293. EDN: kbrpdu

For citation:


Savateeva-Lyubimova T.N., Sivak K.V., Stosman K.I. Peripheral neurotoxicity of microtubule inhibitor chemotherapeutic agents. Part 1. History of taxanes, mechanism of therapeutic action, clinical symptoms (literature review). Toxicological Review. 2026;34(4):285-293. (In Russ.) https://doi.org/10.47470/0869-7922-2026-34-4-285-293. EDN: kbrpdu

Химиоиндуцированная периферическая полинейропатия (ХИПН) – одно из наиболее распространённых осложнений противоопухолевой терапии, обусловливающее раннюю её приостановку или снижение дозы препарата, встречаемость которого составляет от 19 до более 85%. Нейротоксические эффекты, оказываемые противоопухолевыми препаратами, различаются по своей природе, зависят от типа и части вовлечённых клеток (тканей), могут спонтанно исчезать после прекращения лечения и выведения препарата из организма или приобретать хронический характер, что значительно влияет на качество жизни больных [1–5].

ХИПН ежегодно поражает несколько миллионов пациентов и клинически представляет собой преимущественно сенсорную нейропатию, сопровождающуюся двигательными и вегетативными изменениями различной интенсивности и продолжительности. В связи с этим ХИПН представляет собой серьёзную проблему как для болеющих пациентов, так и получавших в прошлом терапию злокачественного новообразования, поскольку в настоящий момент не существует эффективных методов профилактики и лечения данного синдрома. Выживаемость при ряде злокачественных новообразований продолжает улучшаться, поэтому увеличивается и распространённость подобного осложнения терапии, оказывающего заметное и часто недооценённое влияние на качество жизни и безопасность пациентов. В тяжёлых случаях ХИПН может привести к парезу, полной иммобилизации и тяжёлой инвалидности [6–9].

Существует шесть основных групп веществ, вызывающих повреждение периферических сенсорных, двигательных и вегетативных нейронов, что приводит к развитию ХИПН: таксаны, противоопухолевые препараты на основе платины, алкалоиды барвинка, эпотилоны (иксабепилон), ингибиторы протеасом (бортезомиб) и иммуномодулирующие препараты (талидомид). Среди них наиболее нейротоксичными являются препараты на основе платины, таксаны, иксабепилон и талидомид. Менее нейротоксичные, но также часто используемые препараты, – бортезомиб и алкалоиды барвинка [4, 7, 10, 11].

В данной статье рассматривается история и происхождение таксанов, механизм их терапевтического действия, клиническая картина ХИПН.

Таксаны – антимитотические химиотерапевтические препараты

Таксаны представляют собой класс противоопухолевых препаратов, действующих на функциональное состояние микротрубочек, приводя к их стабилизации посредством связывания с субъединицами β-тубулина. Ключевыми препаратами этого класса являются паклитаксел (таксол) и доцетаксел (таксотер), одобренные для лечения различных видов рака, в том числе рака яичников, молочной железы, немелкоклеточного рака лёгких и рака предстательной железы, а также кабазитаксел и абраксан. Паклитаксел, выделенный из экстрактов коры тихоокеанского тиса (Taxus brevifolia), известного своими токсическими свойствами с древних времён, был первым описанным в литературе препаратом, воздействующим на микротрубочки, представляющие собой полимеры гетеродимеров α-и β-тубулина и участвующие во многих важных клеточных процессах [2, 12, 13]. Доцетаксел был позднее выделен из европейского тиса (Taxus baccata) и структурно отличается от паклитаксела [12]. Кабазитаксел – полусинтетическое лекарственное средство, являющееся дериватом доцетаксела с дополнительной метиловой группой [14]. Препарат абраксан содержит нанодисперсный паклитаксел, стабилизированный альбумином [15].

В настоящей работе основное внимание мы уделили паклитакселу – одному из наиболее часто используемых противораковых препаратов, наиболее нейротоксичному из группы таксанов [16, 17].

Механизм терапевтического действия паклитаксела

Микротрубочки представляют собой высокодинамичные структуры цитоскелета – полимерной цепи, состоящей из двух доменов тубулина (α- и β-), и играющие важнейшую роль в делении клеток и других ключевых клеточных функциях, таких как структурная поддержка, формирование митотического веретена, сегрегация хромосом, обеспечение внутриклеточного транспорта до миграции и дифференцировки [18, 19]. Паклитаксел, связываясь с внутренней поверхностью микротрубочек вблизи нуклеотидсвязывающего участка β-тубулина, ингибирует деполимеризацию тубулина, что ведёт к нарушению формирования митотического веретена и блокаде клеточного цикла в опухолевых клетках в фазе G2/M. Длительная задержка в фазе G2/M приводит к остановке митоза и запуску апоптотической программируемой клеточной гибели [17, 20, 21]. В митотических клетках таксаны предотвращают прикрепление микротрубочек к кинетохорам. Неприкреплённые кинетохоры вызывают митотический арест, и клетка подвергается митотической катастрофе, что приводит к её гибели, сопровождающейся частичными морфологическими и биохимическими признаками апоптоза и некроптоза [22]. Апоптоз, индуцированный паклитакселом, связан с сигнальными путями р38 митоген-активируемой протеинкиназы, аномальной активацией циклинзависимых киназ, ядерным фактором каппа B (NF- κB) и N-концевой киназой c-Jun или стресс-активируемой протеинкиназой (JNK/SAPK), серин/треонин киназа-зависимым фосфорилированием Bcl-2 и сигнальным путём p53 [23– 27]. В исследовании, проведённом Khing T.M. и соавт. на клетках аденокарциномы желудка человека (AGS), было показано, что паклитаксел индуцировал внутренний апоптоз путём расщепления каспазы-3 и поли(АДФ-рибоза)полимеразы (PARP) и приводил к образованию многоядерных клеток [23]. В экспериментах, проведённых Mohiuddin M. и Kasahara K. [28] на сублинии PC9-MET – линии опухолевых клеток, полученных из клеток аденокарциномы лёгкого человека (линия РС9), было показано, что паклитаксел ингибирует пролиферацию клеток PC9-MET, усиливает выработку АФК (активные формы кислорода) и вызывает повреждение ДНК.

Также проницаемость митохондриальных мембран рассматривается как значимый фактор в апоптоз-опосредованной гибели раковых клеток [29]. В условиях митохондриальной перегрузки кальцием, вызванной окислительным стрессом, открытие неспецифического канала с чётко определённым диаметром в митохондриальной мембране (митохондриальная пора проницаемости (mPTP) позволяет осуществлять свободный обмен между митохондриальным матриксом и внемитохондриальным цитозолем растворённых веществ и белков до 1,5 кДа, включая ионы кальция [29]. Многобелковый канальный комплекс mPTP расположен на митохондриальных мембранах и считается важнейшим регулятором поддержания митохондриальной дыхательной цепи [30, 31].

Большое значение в механизмах терапевтического действия химиопрепаратов придаётся и неапоптотической клеточной смерти, модулируемой митохондриями, в том числе аутофагии [23]. Аутофагия, также называемая макроаутофагией, представляет собой процесс катаболической деградации клеток, вызываемой нехваткой питательных веществ или метаболическим стрессом [32–34]. Кроме того, значительное увеличение маркёра аутофагии LC3B-II вместе с Atg5, классом III PI3K и Beclin-1, а также снижение регуляции p62 после лечения паклитакселом подтвердили, что препарат индуцировал аутофагию. Результат вестерн-блоттинга показал, что расщеплённые формы каспазы-3, каспазы-9 и PARP были значительно индуцированы, что дополнительно указывает на наличие апоптоза. Кроме того, выявлены значительное увеличение экспрессии белка LC3B – маркёра аутофагии и индукции митотической катастрофы [35]. Некоторые опухолевые клетки выходят из митоза без деления и возвращаются в интерфазу («митотическое проскальзывание»), избегая последующей клеточной гибели, что считается основным механизмом, ограничивающим эффективность антитубулиновых агентов [36–37].

Общепринято мнение о том, что таксаны, стабилизируя микротрубочки, запускают апоптотические процессы, приводящие к гибели опухолевой клетки. Но в настоящее время внимание исследователей направлено и на немитотический механизм их гибели – образование множественных микроядер и разрыв ядерной мембраны, что является важным аспектом действия паклитаксела [37]. Ещё одним путём гибели опухолевых клеток при применении противоопухолевой терапии является блокада клеточного цикла. Последний тесно связан с циклинзависимыми киназами, которые, катализируя фосфорилирование белков, контролируют многие клеточные процессы, регулируя межклеточную коммуникацию и координацию сложных функций [38]. Подавление старения опухолевых клеток под действием терапии также является идеальной стратегией для повышения чувствительности к химиотерапии [30, 39].

Терапевтическая активность паклитаксела зависит не только от прямого воздействия препарата на опухолевые клетки, но и от его влияния на различные клеточные популяции, присутствующие в микроокружении опухоли. К этим механизмам в противоопухолевом действии таксанов, в том числе паклитаксела, относятся индукция активных форм кислорода, антиангиогенная и иммуномодулирующая активность, влияние на гомеостаз кальция [19, 40–42]. Модуляция таксанами высвобождения как проангиогенных, так и антиангиогенных факторов (снижение уровня проангиогенных факторов VEGF, bFGF и Ang-1, повышение – содержания ингибитора ангиогенеза тромбоспондина-1 (TSP-1), способствует уменьшению микрососудов в опухоли независимо от их влияния на сборку микротрубочек. Иммунные клетки способствуют модуляции воспаления и ингибированию адаптивного иммунитета, вызывая мощный провоспалительный ответ (повышение уровня IFNy, IL-2, IL-6, гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (GM-CSF) и увеличение экспрессии лиганда запрограммированной смерти 1 (PDL-1). Макрофаги, наиболее многочисленные клетки в микроокружении опухоли, выполняют такие функции, как презентация антигенов, фагоцитоз, и способствуют разрушению опухолевых клеток путём продукции оксида азота и активных форм кислорода (АФК), а также с помощью высвобождения лизосомальных ферментов.

Клиническая картина и частота развития паклитаксел-индуцированной нейропатии

Периферическая нейропатия, индуцированная таксанами, клинически характеризуется сенсорными и двигательными симптомами (жгучая боль, онемение, снижение проприоцепции, слабость, нарушение равновесия, дефицит мелкой моторики и потеря двигательной функции в конечностях, варьирующейся от лёгкой до тяжёлой степени), которые могут сохраняться в течение длительного времени после завершения лечения.  Возникновение боли в руках и ногах по типу «перчатки и чулка» является одним из наиболее распространённых факторов, ограничивающих дозу лечения. Нейропатия проявляется не только болью, но и онемением, потерей вибрационной чувствительности из-за поражения крупных сенсорных нейронов, а также дизестезией и повышенной чувствительностью к холоду и механическим воздействиям, функции которых выполняются малыми Aδ- и C-волокнами. При этом тяжесть проявлений часто зависит от дозы, что требует клинической коррекции лечения [43, 44]. Хотя характер и тяжесть нейропатии зависит от конкретного противоопухолевого лекарственного средства, кумулятивной дозировки, способа введения и индивидуальных факторов, в целом она может достигать 89% во время или сразу после применения и 85% в отдалённом периоде [4]. Так, проведённое проспективное исследование оценки развития ХИПН у пациентов, получавших 4–6 циклов химиотерапии на основе и таксанов (паклитаксел и доцетаксел), продемонстрировало наличие сообщений о лёгких, умеренных или тяжёлых сенсорных симптомах в дистальных конечностях, связанных со снижением глубоких сухожильных рефлексов и вибрационной чувствительности, у 90% больных, из которых у 75% было обнаружено объективное снижение чувствительности [10]. Как было показано в работе Чижа Г.А. и соавт., в отделении онкологии, реабилитации и паллиативной помощи КБ РАН за период с 01.03.2023 по 01.08.2023 был выявлен 41 случай периферической нейропатии у пациентов, получавших химиотерапию препаратами платины и таксанового ряда, что составило более 80% всех больных, получавших химиотерапевтическое лечение указанными группами противоопухолевых препаратов в условиях отделения [11].

Что касается паклитаксела, то он вызывает двустороннюю дистальную симметричную аксональную невропатию, которая преимущественно характеризуется сенсорными симптомами. Часто наблюдается потеря чувствительности, зависящая как от повреждения крупных, так и мелких волокон. Рефлексы ахиллова сухожилия, амплитуды сенсорных нервных потенциалов снижены или отсутствуют. Также часто выражено снижение амплитуды движения в икроножных мышцах, что свидетельствует о ранней функциональной дисфункции.

Нейропатические симптомы могут развиваться через 24–72 часа после начала лечения препаратом в высокой дозе (250 мг/м²), но чаще возникают после нескольких курсов в дозе < 200 мг/м² [10, 44–46]. Так, у 20 пациенток с раком молочной железы, получивших медианное количество доз паклитаксела, составившее 5,6 (диапазон 1–10), наиболее распространёнными были нарушения при застёгивании пуговиц на одежде (35%), подъёме по лестнице – спотыкания, падения и дискомфорт (30%), ходьбе (20%) [47].

В проспективном исследовании, посвящённом оценке паклитаксел-индуцированной нейропатии у 300 пациенток с неметастатическим раком молочной железы, получавших терапию препаратом в дозе 80 мг/м² еженедельно в течение 12 недель на ранней стадии болезни, было показано, что частота развития патологии возрастала с увеличением кумулятивной дозы паклитаксела, при этом ранние проявления нейротоксичности наблюдались у 34,7% пациенток при достижении кумулятивной дозы 320 мг/м² и у 92,7% – при достижении дозы 960 мг/м² [48].

В проспективном когортном исследовании, проведённом на 514 пациентках с диагнозом «инвазивный рак молочной железы», у 60% были выявлены двигательные (слабость в ногах) и вегетативные (затуманенное зрение) нарушения, в то время как сенсорные симптомы были относительно слабо выражены [49]. Проспективная комплексная оценка частоты и тяжести ХИПН у пациенток с раком молочной железы, получавших паклитаксел (175 мг/м² один раз в три недели, четыре цикла) и доцетаксел (75–100 мг/м² один раз в три недели, четыре цикла) путём внутривенной инфузии, была проведена с использованием шкалы NCI-CTCAT и опросника PNQ. Выявлено значительное увеличение частоты и тяжести сенсорной нейропатии с течением времени наблюдения (13 недель) [50]. Аналогичные данные были получены и в исследовании, проведённом на 82 пациентках с раком молочной железы, имевших симптомы ХИПН [51], а также на 141 пациентке [52].

Наряду с нейропатическими симптомами, наблюдающимися во время лечения (острая нейропатия), большое значение для качества жизни больных имеет феномен персистирующей периферической таксан-(паклитаксел)-индуцированной нейропатии, выражающейся в ухудшении неврологической симптоматики после прекращения терапии, что оказывает выраженное отрицательное влияние на качество жизни [53, 54]. Симптомы обычно включают покалывание в ступнях, онемение в ногах, судороги, трудность подъёма по лестнице [55]. В исследовании, проведённом на 19 пациентках с раком молочной железы более чем через год после еженедельной терапии паклитакселом (медианное время после завершения химиотерапии составило 2,3 года), показано наличие персистирующей нейропатии у семи женщин [56]. Изучение вибрационной чувствительности в кистях рук, противоположных операционному полю, у пациенток с ранним раком молочной железы, через 1,5–3 месяца после окончания химиотерапии паклитакселом (р = 0,001) и через 12 месяцев (р = 0,01) показало значимое её снижение по сравнению с контрольной группой (90 больных и 30 здоровых женщин) [57]. Аналогичные данные о персистирующей периферической нейропатии были получены и в экспериментальных исследованиях. Так, в работе Maiarù M. и соавт. было изучено влияние различных доз паклитаксела на нейропатическую боль и функцию седалищного нерва в мышиной модели. Было показано, что у мышей, получавших паклитаксел в дозах 0,002 мг/кг массы тела (м.т.) (n = 9), 2 мг/кг м.т. (n = 8) или 4 мг/кг м.т. (n = 8) внутривенно до начала эксперимента, на 2-й, 4-й и 6-й дни во всех случаях препарат вызывал нейропатическую боль, проявляющуюся в виде аллодинии и (или) гипералгезии в течение 21 дня наблюдения, что свидетельствует о хронизации патологического процесса в данной модели. У животных, получавших 4 мг/кг паклитаксела, также проводился анализ походки в начале исследования, в конце лечения и еженедельно по завершении. Индекс статической активности седалищного нерва выявил постуральные дефекты у данных особей, в том числе изменение опоры лап, аномалию пальцев ног во время ходьбы на 21-й день эксперимента [58]. В исследованиях, проведённых на крысах-самцах Sprague-Dawley, было показано, что повторное введение паклитаксела в дозе 6 мг/кг м.т. внутрибрюшинно один раз в неделю в течение четырёх недель приводило к развитию механической аллодинии, оценённой в тесте фон Фрея на 1-й, 15-й, 12-й, 19-й, 26-й и 29-й дни после окончания применения препарата. Для гистопатологической оценки седалищные нервы крыс были взяты на 30-й день. Результаты показали как усиление тактильной аллодинии у опытных животных по сравнению с контрольной группой (физиологический раствор), так и наличие аксонопатии [59].

Заключение

Резюмируя вышеизложенное, необходимо заключить, что патофизиология ХИПН до конца не изучена, а процессы, посредством которых химиотерапевтические препараты повреждают структуры нервной системы, влияя на миелиновые оболочки, сенсорные клеточные тела в ганглии дорсальных корешков и на аксональные компоненты, являются многофакторными и включают изменения в цитоскелете нейронов, разрушение микротрубочек, окислительный стресс и прямое повреждение митохондрий, изменённую активность ионных каналов, повреждение миелиновой оболочки, повреждение ДНК, развитие нейровоспаления через активацию глиальных клеток и другие механизмы [9, 60].

Современные представления о механизмах нейротоксичности паклитаксела будут изложены во второй части данного обзора.

Список литературы

1. Peters J., Staff N.P. Update on Toxic Neuropathies. Curr Treat Options Neurol. 2022; 24(5): 203–16. https://doi.org/10.1007/s11940-022-00716-5

2. Тихонова О.А., Дружинин Д.С., Тынтерова А.М., Реверчук И.В. Современное представление о химиоиндуцированной полинейропатии (обзор литературы). Нервно-мышечные болезни. 2023; 13(1): 10–21. https://doi.org/10.17650/2222-8721-2023-13-1-10-21 https://elibrary.ru/oxznha

3. Schwab L., Visovsky C. Psychological distress and quality of life in breast cancer survivors with taxane-induced peripheral neuropathy: A scoping review. Front Oncol. 2023; 12: 1005083. https://doi.org/10.3389/fonc.2022.1005083

4. Tao Z., Chen Z., Zeng X., Cui J., Quan M. An emerging aspect of cancer neuroscience: A literature review on chemotherapy-induced peripheral neuropathy. Cancer Lett. 2024; 611: 217433. https://doi.org/10.1016/j.canlet.2024.217433

5. Мулюкова Д.М., Сакаева Д.Д. Что мы знаем о нейротоксичности? Поддерживающая терапия в онкологии. 2025; 2(1): 13–20. https://doi.org/10.17650/3034-2473-2025-2-1-13-20

6. Li Y., Lustberg M.B., Hu S. Emerging Pharmacological and Non-Pharmacological Therapeutics for Prevention and Treatment of Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy. Cancers (Basel). 2021; 13(4): 766. https://doi.org/10.3390/cancers13040766

7. Jordi С.-М. 2022. ‘Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy: Mechanisms and Clinical Assessment’. Neurotoxicity – New Advances. IntechOpen. https://doi.org/10.5772/intechopen.100495

8. Li X., Wu L., Bai D., Li J. Peripheral neurotoxicity induced by albumin-bound paclitaxel: a case report. Front Oncol. 2024;14:1440205. https://doi.org/ 10.3389/fonc.2024.1440205

9. Mattar M., Umutoni F., Hassan M.A., Wamburu M.W., Turner R., Patton S., et al. Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy: A Recent Update on Pathophysiology and Treatment. Life (Basel). 2024; 14(8): 991. https://doi.org/10.3390/life14080991

10. Myftiu B., Hundozi Z., Sermaxhaj F., Blyta A., Shala N., Jashari F., at al. Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy (CIPN) in Patients Receiving 4-6 Cycles of Platinum-Based and Taxane-Based Chemotherapy: A Prospective, Single-Center Study from Kosovo. Med Sci Monit. 2022; 28: e937856. https://doi.org/10.12659/MSM.937856

11. Чиж Г.А., Рыков И.В., Орлова Д.С., Кузин С.О., Эльмурзаев А.Б., Шишкин А.Б. и др. Существующие проблемы профилактики и лечения химиоиндуцированной периферической нейропатии: мировой опыт и собственные данные. Злокачественные опухоли. 2024; 14(1): 74–82. https://doi.org/10.18027/2224-5057-2024-14-1-74-82 https://elibrary.ru/nxmtdc

12. Lai J.I., Chao T.C., Liu C.Y., Huang C.C., Tseng L.M. A systemic review of taxanes and their side effects in metastatic breast cancer. Front Oncol. 2022; 12: 940239. https://doi.org/10.3389/fonc.2022.940239

13. Ismail U., Killeen R.B. Taxane Toxicity. [Updated 2023 Mar 12]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing. 2025. Available: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK589655/

14. Suzuki K., Matsuyama H., Matsubara N., Kazama H., Ueno F., Uemura H. Current Evidence on Cabazitaxel for Prostate Cancer Therapy: A Narrative Review. Int J Urol. 2025; 32(5): 475–87. https://doi.org/10.1111/iju.70019

15. Mosca L., Ilari A., Fazi F., Assaraf Y.G., Colotti G. Taxanes in cancer treatment: Activity, chemoresistance and its overcoming. Drug Resist Updat. 2021;54:100742. https://doi.org/10.1016/j.drup.2020.100742

16. Chua K.C., El-Haj N., Priotti J., Kroetz D.L. Mechanistic insights into the pathogenesis of microtubule-targeting agent-induced peripheral neuropathy from pharmacogenetic and functional studies. Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2022; 130 Suppl 1(Suppl 1): 60–74. https://doi.org/10.1111/bcpt.13654

17. Awosika A.O., Farrar M.C., Jacobs T.F. Paclitaxel. [Updated 2023 Nov 18]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing. 2025. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK536917/

18. Akhmanova A., Kapitein L.C. Mechanisms of microtubule organization in differentiated animal cells. Nat Rev Mol Cell Biol. 2022; 23(8): 541–58. https://doi.org/10.1038/s41580-022-00473-y

19. Beretta G.L., Cassinelli G., Rossi G., Azzariti A., Corbeau I., Tosi D., at al. Novel insights into taxane pharmacology: An update on drug resistance mechanisms, immunomodulation and drug delivery strategies. Drug Resist Updat. 2025; 81: 101223. https://doi.org/10.1016/j.drup.2025.101223

20. Xu A.P., Xu L.B., Smith E.R., Fleishman J.S., Chen Z.S., Xu X.X. Cell death in cancer chemotherapy using taxanes. Front Pharmacol. 2024; 14: 1338633. https://doi.org/10.3389/fphar.2023.1338633

21. Vicente J.J., Khan K., Tillinghas G., McFaline-Figuera J.L., Sancak Y., Stella N. The microtubule targeting agent ST-401 triggers cell death in interphase and prevents the formation of polyploid giant cancer cells. J Transl Med. 2024; 22, 441. https://doi.org/10.1186/s12967-024-05234-3

22. Bai Z., Zhou Y., Peng Y., Ye X., Ma L. Perspectives and mechanisms for targeting mitotic catastrophe in cancer treatment. Biochim Biophys Acta Rev Cancer. 2023; 1878(5): 188965. https://doi.org/10.1016/j.bbcan.2023.188965

23. Khing T.M., Choi W.S., Kim D.M., Po W.W., Thein W, Shin C.Y., at al. The effect of paclitaxel on apoptosis, autophagy and mitotic catastrophe in AGS cells. Sci Rep. 2021; 11(1): 23490. https://doi.org/10.1038/s41598-021-02503-9

24. Chaudhry G.E., Md Akim A., Sung Y.Y., Sifzizul T.M.T. Cancer and apoptosis: The apoptotic activity of plant and marine natural products and their potential as targeted cancer therapeutics. Front Pharmacol. 2022; 13: 842376. https://doi.org/10.3389/fphar.2022.842376

25. Zhao S., Tang Y., Wang R., Najafi M. Mechanisms of cancer cell death induction by paclitaxel: an updated review. Apoptosis. 2022; 27(9–10): 647–67. https://doi.org/10.1007/s10495-022-01750-z

26. Gong L., Huang D., Shi Y., Liang Z., Bu H. Regulated cell death in cancer: from pathogenesis to treatment. Chin Med J (Engl). 2023; 136(6): 653–665. https://doi.org/10.1097/CM9.0000000000002239

27. Mustafa M., Ahmad R., Tantry I.Q., Ahmad W., Siddiqui S., Alam M., at al. Apoptosis: A Comprehensive Overview of Signaling Pathways, Morphological Changes, and Physiological Significance and Therapeutic Implications. Cells. 2024; 13(22): 1838. https://doi.org/10.3390/cells13221838

28. Mohiuddin M., Kasahara K. The Mechanisms of the Growth Inhibitory Effects of Paclitaxel on Gefitinib-resistant Non-small Cell Lung Cancer Cells. Cancer Genomics Proteomics. 2021; 18(5): 661–73. https://doi.org/10.21873/cgp.20288

29. Waseem M., Wang B.D. Promising Strategy of mPTP Modulation in Cancer Therapy: An Emerging Progress and Future Insight. Int J Mol Sci. 2023; 24(6): 5564. https://doi.org/10.3390/ijms24065564

30. Bonora M., Giorgi C., Pinton P. Molecular mechanisms and consequences of mitochondrial permeability transition. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2022; 23: 266–285. https://doi.org/10.1038/s41580-021-00433-y

31. Malla S., Neupane R., Sood S., Hussein N., Abou-Dahech M., Terrero D., at al. Mitochondria as Regulators of Nonapoptotic Cell Death in Cancer. MedComm (2020). 2025; 6(8): e70244. https://doi.org/10.1002/mco2.70244

32. Khing T.M., Choi W.S., Kim D.M., Po W.W., Thein W., Shin C.Y., at al. The effect of paclitaxel on apoptosis, autophagy and mitotic catastrophe in AGS cells. Sci Rep. 2021; 11(1): 23490. https://doi.org/10.1038/s41598-021-02503-9

33. Zhang P., Cheng Sh., Sheng X., Dai H., He K, Du Y. The role of autophagy in regulating metabolism in the tumor microenvironment. Genes & Diseases. 2023; 10(2): 447–56. https://doi.org/10.1016/j.gendis.2021.10.010

34. Jalali P., Shahmoradi A., Samii A., Mazloomnejad R., Hatamnejad M. R., Saeed A., at al. The role of autophagy in cancer: from mechanism to therapeutic window. Front. Immunol. 2025; 16: 1528230. https://doi.org/10.3389/fimmu.2025.1528230

35. Sung K., Kurowski A., Lansiquot C., Wan K.K., Patnaik S., Walsh M.J., at al. Selective Inhibitors of Autophagy Reveal New Link between the Cell Cycle and Autophagy and Lead to Discovery of Novel Synergistic Drug Combinations. ACS Chem Biol. 2022; 17(12): 3290–7. https://doi.org/10.1021/acschembio.2c00710

36. Mosca L., Ilari A., Fazi F., Assaraf Y.G., Colotti G. Taxanes in cancer treatment: Activity, chemoresistance and its overcoming. Drug Resist Updat. 2021; 54: 100742. https://doi.org/10.1016/j.drup.2020.100742

37. Bai Z., Zhou Y., Peng Y., Ye X., Ma L. Perspectives and mechanisms for targeting mitotic catastrophe in cancer treatment. Biochim Biophys Acta Rev Cancer. 2023; 1878(5): 188965. https://doi.org/10.1016/j.bbcan.2023.188965

38. Smith E.R., Xu X.X. Breaking malignant nuclei as a non-mitotic mechanism of taxol/paclitaxel. J Cancer Biol. 2021; 2(4): 86–93. https://doi.org/10.46439/cancerbiology.2.031

39. Pellarin I., Dall’Acqua A., Favero, A., Segatto I., Rossi V., Crestan N., Karimbayli J., Beletty B., Baldassare G. Cyclin-dependent protein kinases and cell cycle regulation in biology and disease. Sig Transduct Target Ther. 2025; 10 1): 11. https://doi.org/10.1038/s41392-024-02080-z

40. Liu J., Li H., Sun R., Ying G., Liang Z. Targeting PIK3CB/YAP1 improves the sensitivity of paclitaxel by suppressing aging in head and neck squamous tumor cells. Cancer Cell Int. 2025; 25(1): 190. https://doi.org/10.1186/s12935-025-03818-7

41. Ibrahim E.Y., Munshani S., Domenicano I., Rodwin R., Nowak R.J., Pusztai L., at al. A preliminary, prospective study of peripheral neuropathy and cognitive function in patients with breast cancer during taxane therapy. PLoS One. 2022; 17(10): e0275648. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0275648

42. Gupta R., Kadhim M.M., Turki Jalil A., Qasim Alasheqi M., Alsaikhan F., Khalimovna Mukhamedova N., at al. The interactions of docetaxel with tumor microenvironment. Int Immunopharmacol. 2023; 119: 110214. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2023.110214

43. Serpico A.F., Pisauro C., Grieco D. cGAS-dependent proinflammatory and immune homeostatic effects of the microtubule-targeting agent paclitaxel. Front Immunol. 2023; 14: 1127623. https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1127623

44. Timmins H.C., Li T., Trinh T., Kiernan M.C., Harrison M, Boyle F., Friedlander M., Goldstein D., Park S.B. Weekly Paclitaxel-Induced Neurotoxicity in Breast Cancer: Outcomes and Dose Response. Oncologist. 2021; 26(5): 366–74. https://doi.org/10.1002/onco.13697

45. Li R.L., Bai L.X., Liu Y., Yang A.L., Chen L., Zhao F.Y., at al. Profiles of chemotherapy-induced peripheral neuropathy in breast cancer patients undergoing taxane-based chemotherapy: A latent class analysis. Eur J Oncol Nurs. 2025; 74: 102758. https://doi.org/10.1016/j.ejon.2024.102758

46. Godiveau M., Jahanmohan J.P., Abrial C., Durando X. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy in patients with breast cancer treated with taxanes (Review). Oncol Lett. 2025; 30(5): 508. https://doi.org/10.3892/ol.2025.15254

47. Sawa A., Sato R., Matsuo T., Okazaki M., Hashimoto S., Iguchi-Manaka A., at al. Paclitaxel-induced Peripheral Neuropathy and Quality of Life: Sub-analysis of the MICHEL Study. Anticancer Res. 2025; 45(9): 3827–833. https://doi.org/10.21873/anticanres.17742

48. Cimbro E., Dessì M., Ziranu P., Madeddu C., Atzori F., Lai E., at al. Early taxane exposure and neurotoxicity in breast cancer patients. Support Care Cancer. 2024; 32(10): 709. https://doi.org/10.1007/s00520-024-08908-2

49. Mo H., Yan X., Zhao F., Teng Y., Sun X, Lv Z., at al. Association of Taxane Type With Patient-Reported Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy Among Patients With Breast Cancer. JAMA Netw Open. 2022; 5(11): e2239788. https://doi.org/10.1001/jamanetworkopen.2022.39788

50. Пилипенко П.И., Добреско Ю.А. Проспективная комплексная оценка химио-индуцированной периферической нейропатии у пациенток с раком молочной железы. Journal of Siberian Medical Sciences. 2022; 6(3): 102–16. https://doi.org/10.31549/2542-1174-2022-6-3-102-116 https://elibrary.ru/yajtfi

51. Salehifar E., Janbabaei G., Alipour A., Tabrizi N., Avan R. Taxane-induced peripheral neuropathy and quality of life in breast cancer patients. J Oncol Pharm Pract. 2020; 26(6): 1421–8. https://doi.org/10.1177/1078155219898511

52. Rattanakrong N., Siriphorn A., Boonyong S. Incidence density and factors associated with peripheral neuropathy among women with breast cancer during taxane-based chemotherapy. Sci. Rep. 2022; 12(1): 10632. https://doi.org/10.1038/s41598-022-14870-y

53. Каракулова Ю.В., Вычугжанина А.А. Клиническое наблюдение стойкой химиоиндуцированной полинейропатии при раке молочной железы. РМЖ. 2025; 4: 31–5. https://doi.org/10.32364/2225-2282-2025-4-6 https://elibrary.ru/billrn

54. Kruse F.L., Bille M.B., Lendorf M.E., Vaabengaard S., Birk S. Coasting related to taxane-induced peripheral neuropathy in patients with breast cancer: a systematic review. Acta Oncol. 2025; 64: 78–86. https://doi.org/10.2340/1651-226X.2025.42109

55. Engvall K., Uvdal H., Björn N., Åvall-Lundqvist E., Gréen H. Prediction models of persistent taxane-induced peripheral neuropathy among breast cancer survivors using whole-exome sequencing. NPJ Precis Oncol. 2024; 8(1): 102. https://doi.org/10.1038/s41698-024-00594-x

56. Shigematsu H., Kimura Y., Itagaki T., Yasui D. Persistent weekly paclitaxel-induced peripheral neuropathy in early breast cancer patients enrolled in a randomized trial of cryotherapy. Medicine (Baltimore). 2023; 102(16): e33580. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000033580

57. Nielsen A., Marstrand S.D., Marina D., Andersson M., Jensen L.T., Buch-Larsen K., at al. Assessing Chemotherapy-Induced Peripheral Neuropathy in Postmenopausal Breast Cancer Patients Using Vibration Perception Threshold. Cancer Invest. 2025; 43(5): 315–25. https://doi.org/10.1080/07357907.2025.2510996

58. Maiarù M., Petrini A., Angelis F., Nazio F., Marinelli S. Unveiling the peripheral nerve hallmarks of chemotherapy-induced neuropathy: insights from paclitaxel treatment in a murine model. Neurobiol Pain. 2025; 18: 100200. https://doi.org/10.1016/j.ynpai.2025.100200

59. Kawashiri T., Mori K., Ishida H., Ueda M., Yao K., Nagahama F., at al. Paclitaxel-induced peripheral neuropathy in male rats attenuated by calmangafodipir, a superoxide dismutase mimetic. J Pharmacol Sci. 2025; 157(1): 8–11. https://doi.org/10.1016/j.jphs.2024.11.004

60. Maihöfner C., Diel I., Tesch H., Quandel T., Baron R. Chemotherapy-induced peripheral neuropathy (CIPN): current therapies and topical treatment option with high-concentration capsaicin. Support Care Cancer. 2021; 29(8): 4223–38. https://doi.org/10.1007/s00520-021-06042-x


Об авторах

Татьяна Николаевна Саватеева-Любимова
ФГБУ «Научно-исследовательский институт гриппа имени А.А. Смородинцева» Минздрава России
Россия

Доктор медицинских наук, ведущий сотрудник лаборатории безопасности лекарственных средств ФГБУ «НИИ гриппа им. А.А. Смородинцева» , 197376, Санкт-Петербург, Россия

e-mail: drugs_safety@mail.ru



Константин Владимирович Сивак
ФГБУ «Научно-исследовательский институт гриппа имени А.А. Смородинцева» Минздрава России
Россия

Доктор биологических наук, заведующий отделом доклинических исследований ФГБУ «НИИ гриппа им. А.А. Смородинцева», 197376, Санкт-Петербург, Россия

e-mail: kvsivak@gmail.com



Кира Иосифовна Стосман
ФГБУ «Научно-исследовательский институт гриппа имени А.А. Смородинцева» Минздрава России
Россия

Кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории безопасности лекарственных средств ФГБУ «НИИ гриппа им. А.А. Смородинцева», 197376, Санкт-Петербург, Россия

e-mail: labtox6@rambler.ru



Рецензия

Для цитирования:


Саватеева-Любимова Т.Н., Сивак К.В., Стосман К.И. Периферическая нейротоксичность химиотерапевтических препаратов – ингибиторов микротрубочек. Часть 1. История происхождения таксанов, механизм терапевтического действия, клиническая картина (обзор литературы). Токсикологический вестник. 2026;34(4):285-293. https://doi.org/10.47470/0869-7922-2026-34-4-285-293. EDN: kbrpdu

For citation:


Savateeva-Lyubimova T.N., Sivak K.V., Stosman K.I. Peripheral neurotoxicity of microtubule inhibitor chemotherapeutic agents. Part 1. History of taxanes, mechanism of therapeutic action, clinical symptoms (literature review). Toxicological Review. 2026;34(4):285-293. (In Russ.) https://doi.org/10.47470/0869-7922-2026-34-4-285-293. EDN: kbrpdu

Просмотров: 129

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0869-7922 (Print)
ISSN 3034-4611 (Online)
X